<?xml version='1.0' encoding='utf-8'?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.2 20190208//EN" "http://jats.nlm.nih.gov/publishing/1.2/JATS-journalpublishing1.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="ru" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="issn">2658-6533</journal-id><journal-title-group><journal-title>Научные результаты биомедицинских исследований</journal-title></journal-title-group><issn pub-type="epub">2658-6533</issn></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.18413/2658-6533-2024-10-3-0-7</article-id><article-id pub-id-type="publisher-id">3508</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Фармакология, клиническая фармакология</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>&lt;strong&gt;Выбор рационального инструментария для анализа полифенолов цветков бессмертника песчаного и листьев артишока колючего в комплексе фармакологических исследований&lt;/strong&gt;</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>&lt;strong&gt;Selection of rational tools for the analysis of polyphenols of sandy everlasting flowers and artichoke leaves in the complex of pharmacological studies&lt;/strong&gt;</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="ru"><surname>Худоян</surname><given-names>Руслан Павлович</given-names></name><name xml:lang="en"><surname>Khudoyan,</surname><given-names>Ruslan P.</given-names></name></name-alternatives><email>rus4394@yandex.ru</email></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="ru"><surname>Писарев</surname><given-names>Дмитрий Иванович</given-names></name><name xml:lang="en"><surname>Pisarev</surname><given-names>Dmitri I.</given-names></name></name-alternatives><email>juniper05@mail.ru</email></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="ru"><surname>Новиков</surname><given-names>Олег Олегович</given-names></name><name xml:lang="en"><surname>Novikov</surname><given-names>Oleg O.</given-names></name></name-alternatives><email>ole9222@yandex.ru</email></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="ru"><surname>Ягников</surname><given-names>Сергей Александрович</given-names></name><name xml:lang="en"><surname>Yagnikov</surname><given-names>Sergey A.</given-names></name></name-alternatives><email>yagnikov-sa@rudn.ru</email></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="ru"><surname>Малютина</surname><given-names>Анастасия Юрьевна</given-names></name><name xml:lang="en"><surname>Malyutina</surname><given-names>Anastasia Yu.</given-names></name></name-alternatives><email>malyutina_a@bsu.edu.ru</email></contrib></contrib-group><pub-date pub-type="epub"><year>2024</year></pub-date><volume>10</volume><issue>3</issue><fpage>0</fpage><lpage>0</lpage><self-uri content-type="pdf" xlink:href="/media/medicine/2024/3/Биомедисследования-105-122.pdf" /><abstract xml:lang="ru"><p>Актуальность: Патология гепатобилиарной системы включает гетерогенную группу заболеваний печени и желчевыводящей системы, вызванных вирусными, бактериальными и паразитарными инфекциями, новообразованиями, токсичными химическими веществами, в том числе алкоголем, алиментарными погрешностями, нарушениями обмена веществ и сердечной недостаточностью. Одной из базовых групп для фармакологической коррекции данной группы заболеваний является использование гепатопротекторов, препаратов, оказывающих преимущественно избирательное воздействие на печень. Действующим началом большинства растительных гепатопротекторов являются флавоноиды и гидроксикоричные кислоты. К наиболее востребованным растениям &amp;ndash; гепатопротекторам, содержащим указанные действующие вещества, можно отнести артишок колючий &amp;ndash; Cynara scolymus (L.) и бессмертник песчаный &amp;ndash; Helichrysum arenarium (L.) Moench, растение, обладающее желчегонным действием, также способное проявлять гепатопротекторную активность. Цель исследования: Разработка и сравнительная характеристика методик анализа полифенольного состава цветков бессмертника песчаного и листьев артишока колючего в комплексных фармакологических исследованиях с помощью методов ВЭЖХ и капиллярного электрофореза. Материалы и методы: Сумму полифенольных соединений подвергали хроматографическому разделению в градиентном режиме элюирования. Капиллярный электрофорез проводился в варианте мицеллярной электрокинетической хроматографии (МЭКХ). В качестве буферного раствора использовали смесь: боратный буфер 20мМ (рН &amp;ndash; 9,3) &amp;ndash; бета-циклодекстрин 20 мМ &amp;ndash; спирт этиловый (10:10:5). Результаты: Электрофореграммы разделения экстракта из листьев артишока методом МЭКХ, показали наличие 7 компонентов, принадлежащие оксикоричным кислотам и флавоноидам. Доминирующими являются кислота хлорогеновая и лютеолин-7-глюкозид. Аналогичные результаты получены методом ВЭЖХ. На электрофореграмме экстракта цветков бессмертника обнаруживается 9 компонентов, из которых доминирующий принадлежит изосалипурпозиду. Хроматографический анализ экстракта цветков бессмертника показал присутствие тех же компонентов. Заключение: Результаты анализа полифенольного комплекса листьев артишока и цветков бессмертника с помощью капиллярного электрофореза согласуются с данными, полученными в ходе хроматографирования методом ВЭЖХ. Это позволяет сделать вывод, что метод МЭКХ позволяет идентифицировать и проводить количественную оценку каждого компонента в листьях артишока и цветках бессмертника наряду с ВЭЖХ. Причём исполнение анализа с помощью КЭ является более экономически оправданным, по сравнению с ВЭЖХ, поскольку не требует затрат растворителей для подвижной фазы и наличия набора колонок</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Background: Pathology of the hepatobiliary system includes a heterogeneous group of diseases of the liver and biliary system caused by viral, bacterial and parasitic infections, neoplasms, toxic chemicals, including alcohol, nutritional errors, metabolic disorders and heart failure. One of the basic groups for pharmacological correction of this group of diseases is the use of hepatoprotectors, drugs that have a predominantly selective effect on the liver. The active ingredient of most plant hepatoprotectors are flavonoids and hydroxycinnamic acids. The most popular plants &amp;ndash; hepatoprotectors containing these active substances include &amp;ndash; artichoke prickly (Cynara scolymus (L.)) and sandy everlasting (Helichrysum arenarium (L.) Moench), a plant with choleretic action, also capable of hepatoprotective activity. The aim of the study: Development and comparative characterisation of methods for the analysis of polyphenolic composition of sandy everlasting flowers and artichoke leaves in complex pharmacological studies using HPLC and capillary electrophoresis methods. Materials and methods: The sum of polyphenolic compounds was subjected to chromatographic separation in gradient elution mode. Capillary electrophoresis was carried out in a variant of micellar electrokinetic chromatography (MEKC). The buffer solution used was a mixture of: borate buffer 20 mM (pH - 9.3) &amp;ndash; beta-cyclodextrin 20 mM &amp;ndash; ethyl alcohol (10:10:5). Results: The electrophoregrams of the separation of artichoke leaf extract by the MECC method showed the presence of 7 components belonging to oxycinnamic acids and flavonoids. The dominant ones are chlorogenic acid and luteolin-7-glucoside. Similar results were obtained by the HPLC method. The electrophoregram of immortelle flower extract shows 9 components, of which the dominant one belongs to isosalipurposide. Chromatographic analysis of sandy everlasting flower extract showed the presence of the same components. Conclusion: The results of the analysis of the polyphenolic complex of artichoke leaves and sandy everlasting flowers by capillary electrophoresis agree with the data obtained by HPLC chromatography. This allows us to conclude that the MECC method allows the identification and quantification of each component in artichoke leaves and HPLC chromatography flowers along with HPLC. Moreover, the performance of the analysis by CE is more economically feasible than HPLC, since it does not require the use of solvents for the mobile phase and the availability of a set of columns</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>высокоэффективная жидкостная хроматография</kwd><kwd>капиллярный электрофорез</kwd><kwd>артишок колючий</kwd><kwd>бессмертник песчаный</kwd><kwd>флавоноиды</kwd><kwd>гидроксикоричные кислоты</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>high-performance liquid chromatography</kwd><kwd>capillary electrophoresis</kwd><kwd>artichoke prickly pear</kwd><kwd>immortelle of sand</kwd><kwd>flavonoids</kwd><kwd>hydroxycinnamic acids</kwd></kwd-group></article-meta></front><back><ref-list><title>Список литературы</title><ref id="B1"><mixed-citation>Полоусова ЮЕ, Писарев ДИ, Новиков ОО, и др. Спектр фармакологической активности разных групп природных соединений листьев лавра обыкновенного и выбор оптимального экстрагента для извлечения эфирного масла из них. Научные результаты биомедицинских исследований. 2021;7(3):281-295. DOI: https://doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-3-0-7</mixed-citation></ref><ref id="B2"><mixed-citation>Vasil&amp;rsquo;ev VG, Prokop&amp;rsquo;ev AS, Kalabin GA. Identification of Terpene Lactones and Flavonol Glycosides in Preparations Based on Ginkgo Biloba Extract and a New Way of Semi-Quantitative Determination of Flavonol Glycosides by 1H NMR Spectroscopy. Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 2017;43(7):776-782. DOI: https://doi.org/10.1134/S1068162017070172</mixed-citation></ref><ref id="B3"><mixed-citation>Dănăilă-Guidea SM, Eremia MC, Dinu LD, et al. Helichrysum arenarium: From Cultivation to Application. Applied Sciences. 2022;12(20):10241. DOI: https://doi.org/10.3390/app122010241</mixed-citation></ref><ref id="B4"><mixed-citation>Kramberger K, Pražnikar ZJ, Arbeiter AB, et al. A Comparative Study of the Antioxidative Effects of Helichrysum italicum and Helichrysum arenarium Infusions. Antioxidants. 2021;10(3):380. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10030380</mixed-citation></ref><ref id="B5"><mixed-citation>Babotă M, Mocan A, Vlase L, et al. Phytochemical Analysis, Antioxidant and Antimicrobial Activities of Helichrysum arenarium (L.) Moench. and Antennaria dioica (L.) Gaertn. Flowers. Molecules. 2018;23(2):409. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules23020409</mixed-citation></ref><ref id="B6"><mixed-citation>Kenig S, Kramberger K, Novak K&amp;Scaron;, et al. Helichrysum italicum (Roth) G. Don and Helichrysum arenarium (L.) Moench infusions in reversing the traits of metabolic syndrome: a double-blind randomized comparative trial. Food and Function. 2022;13:7697-7706. DOI: https://doi.org/10.1039/D2FO00880G</mixed-citation></ref><ref id="B7"><mixed-citation>Mao Z, Gan C, Zhu J, et al. Anti-atherosclerotic activities of flavonoids from the flowers of Helichrysum arenarium L. MOENCH through the pathway of anti-inflammation. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters. 2017;27(12):2812-2817. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2017.04.076</mixed-citation></ref><ref id="B8"><mixed-citation>Namkhah Z, Naeini F, Rezayat SM, et al. Does naringenin supplementation improve lipid profile, severity of hepatic steatosis and probability of liver fibrosis in overweight/obese patients with NAFLD? A randomised, double-blind, placebo-controlled, clinical trial. International Journal of Clinical Practice. 2021;75(11):e14852. DOI: https://doi.org/10.1111/ijcp.14852</mixed-citation></ref><ref id="B9"><mixed-citation>Pljevljaku&amp;scaron;ić D, Bigović D, Janković T, et al. Sandy Everlasting (Helichrysum arenarium (L.) Moench): Botanical, Chemical and Biological Properties. Frontiers in Plant Science. 2018;9:1123. DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01123</mixed-citation></ref><ref id="B10"><mixed-citation>De Falco B, Incerti G, Amato M, et al. Artichoke: botanical, agronomical, phytochemical, and pharmacological overview. Phytochemistry Reviews. 2015;14:993-1018. DOI: https://doi.org/10.1007/s11101-015-9428-y</mixed-citation></ref><ref id="B11"><mixed-citation>Ardalani H, Jandaghi P, Meraji A, et al. The Effect of Cynara scolymus on Blood Pressure and BMI in Hypertensive Patients: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled, Clinical Trial. Complementary Medicine Research. 2020;27(1):40-46. DOI: https://doi.org/10.1159/000502280</mixed-citation></ref><ref id="B12"><mixed-citation>Salem MB, Kolsi RBA, Dhouibi R, et al. Protective effects of Cynara scolymus leaves extract on metabolic disorders and oxidative stress in alloxan-diabetic rats. BMC Complementary and Alternative Medicine. 2017;17:328. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-017-1835-8</mixed-citation></ref><ref id="B13"><mixed-citation>Abdel-Moneim A, Ahmed OM, Abd El-Twab SM, et al. Prophylactic effects of Cynara scolymus L. leaf and flower hydroethanolic extracts against diethylnitrosamine/acetylaminoflourene-induced lung cancer in Wistar rats. Environmental Science and Pollution Research. 2021;28:43515-43527. DOI: https://doi.org/10.1007/s11356-021-13391-x</mixed-citation></ref><ref id="B14"><mixed-citation>Abdel-Kader MM, El-Sayed EM, Kassem SS, et al. Protective and antioxidant effects of Cynara scolymus leaves against carbon tetrachloride toxicity in rats. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 2014;5(5):1373-1380.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><mixed-citation>Mejri F, Baati T, Martins A, et al. Phytochemical analysis and in vitro and in vivo evaluation of biological activities of artichoke (Cynara scolymus L.) floral stems: Towards the valorization of food by-products. Food Chemistry. 2020;333:127506. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127506</mixed-citation></ref><ref id="B16"><mixed-citation>Salem MB, Ksouda K, Dhouibi R, et al. LC-MS/MS Analysis and Hepatoprotective Activity of Artichoke (Cynara scolymus L.) Leaves Extract against High Fat Diet-Induced Obesity in Rats. BioMed Research International. 2019;2019:4851279. DOI: https://doi.org/10.1155/2019/4851279</mixed-citation></ref><ref id="B17"><mixed-citation>Salekzamani S, Ebrahimi‐Mameghani M, Rezazadeh K. The antioxidant activity of artichoke (Cynara scolymus): A systematic review and meta‐analysis of animal studies. Phytotherapy Research. 2019;33(1):55-71. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.6213</mixed-citation></ref><ref id="B18"><mixed-citation>Mocelin R, Marcon M, Santo GD, et al. Hypolipidemic and antiatherogenic effects of Cynara scolymus in cholesterol-fed rats. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2016;26(2):233-239. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bjp.2015.11.004</mixed-citation></ref><ref id="B19"><mixed-citation>Turkiewicz IP, Wojdyło A, Tkacz K, et al. Antidiabetic, anticholinesterase and antioxidant activity vs. terpenoids and phenolic compounds in selected new cultivars and hybrids of artichoke Cynara scolymus L. Molecules. 2019;24(7):1222. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24071222</mixed-citation></ref><ref id="B20"><mixed-citation>Magied MMA, Hussien SED, Zaki SM, et al. Artichoke (Cynara scolymus L.) Leaves and Heads Extracts as Hypoglycemic and Hypocholesterolemic in Rats. Journal of Food and Nutrition Research. 2016;4:60-68. DOI: https://doi.org/10.12691/JFNR-4-1-10</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>