16+
DOI: DOI: 10.18413/2658-6533-2023-9-2-0-5

Оценка эффективности применения комплексных фитоадаптогенов в лечении метаболического синдрома
 

Aннотация

Актуальность: Широкая распространенность метаболического синдрома (МС) становится серьезной проблемой населения во всем мире, повышая риск развития сахарного диабета 2 типа и осложнений со стороны сердечно-сосудистой системы. Цель исследования: Оценить в эксперименте вызванные метаболическим синдромом изменения в системе микрогемодинамики, структуре почек, биохимических показателях плазмы крови, стрессоустойчивости крыс и возможности их коррекции комплексными фитоадаптогенами (КФА). Материалы и методы: Эксперимент проведен на 40 крысах-самцах линии Wistar (возраст 9-10 недель, масса 330 ±20 г), разделенных на 3 группы: 1 группа – контрольная, 2 группа – метаболический синдром (МС), 3 группа – коррекция метаболического синдрома КФА. Животных 2,3 группы содержали на диете с высоким содержанием углеводов и жиров в течение 16 недель. Экстракт КФА состоит из 70% спиртовых экстрактов солодки голой, родиолы розовой, элеутерококка колючего в соотношении 1:2:1. Крысы 3-й группы после 16 недель нахождения на диете принимали КФА 14 дней. Кровь для биохимического анализа собирали через пункцию сердца. Ультразвуковую допплерографию использовали для оценки параметров микрогемодинамики. Тревожность и двигательная активность крыс регистрировались в тесте открытое поле (ОП) и рассчитывались с помощью компьютерной программы Realtimer (OpenScience, Россия). Образцы ткани почек окрашивали гематоксилином-эозином (H&E) и изучали под микроскопом Zeiss Axio Lab (Германия). Анализ полученных данных проводился с использованием программного обеспечения Statistica 10.0 («StatSoft, Inc», Россия). Результаты: На основании результатов проведенного эксперимента можно сделать вывод, что параметры микрогемодинамики (достоверное увеличение систолической (Vas) (Р=0,047) и диастолической (Vakd) (Р=0,046) скоростей кровотока), биохимические показатели (снижение относительно МС общего холестерина на 32,8% (р=0,017), триацилглицеридов на 57,36% (р=0,017), ЛПНП на 64,13% (р=0,017)) плазмы крови попадают под прямое действие комплексных фитоадаптогенов при коррекции метаболического синдрома. Заключение: Использование КФА может стать перспективным дополнением в лечении метаболического синдрома и его компонентов (абдомональное ожирение, резистентность к инсулину, дислипидемия, системная дисфункция эндотелия и др.) путем воздействия на центральные патофизиологические звенья и ряд этиологических факторов МС.


Введение. Широкая распространенность метаболического синдрома становится серьезной проблемой населения во всем мире в результате изменений в рационе питания и малоподвижного образа жизни. По данным ВОЗ, более 1,9 миллиардов человек имеют избыточный вес, более 650 миллионов человек страдают ожирением [1, 2].

Метаболический синдром характеризуется резистентностью к инсулину, гипергликемией, дислипидемией, гипертонией и ожирением, является провоспалительным и протромботическим состоянием. Центральную роль в возникновении МС играет жировая ткань - в настоящее время рассматривается как биологически активный эндокринный и паракринный орган. Она продуцирует адипоцитокины, которые включают провоспалительные медиаторы интерлейкин-6 (IL-6) и фактор некроза опухоли α (TNF-α), ингибитор активатора плазминогена-1 (PAI-1). Данные цитокины вызывают воспалительную реакцию и повышают резистентность адипоцитов к инсулину [3]. Ожирение быстро прогрессирует с развитием метаболических нарушений; увеличивает риск развития сахарного диабета 2 типа, сердечно-сосудистых заболеваний, неалкогольной жировой болезни печени [3, 4, 5].  

Очень мало синтетических химических препаратов используется для лечения ожирения, но они имеют высокую стоимость и побочные эффекты. Патофизиология метаболического синдрома очень сложна и диктует необходимость разработки препаратов широкого спектра фармакологической активности, которые воздействовали бы на несколько патогенетических звеньев и этиологических факторов этой патологии. Использование лекарственных растений, обладающих адаптогенными свойствами, может стать значительным шагом в профилактике и лечении метаболического синдрома.

В данном исследовании мы оценили эффективность потенциально новой растительной формулы в лечении метаболического синдрома и ожирения, состоящую из хорошо известных и широко используемых фитоадаптогенов, состоящей из Glycyrrhizaglabra (солодка голая), Rhodiolarosea (родиола розовая), Acanthopanaxsenticosus (элеутерококк колючий), применяемых в комплексе. Использование комплексных фитоадаптогенов (КФА) более целесообразно, так как в отличие от монотерапии, они модулируют биологические процессы. Родиола розовая и солодка голая оказывают противовоспалительное, антиоксидантное действие благодаря ряду метаболитов [6, 7, 8, 9]. Элеутерококк колючий регулирует гомеостатические реакции с помощью нейроэндокринной иммунной системы (НЭИМ), контролирует образование молекулярных шаперонов, активируемых стрессом, кортизола и оксида азота (NO) [10, 11, 12].

Цель исследования. Оценить в эксперименте вызванные метаболическим синдромом изменения в системе микрогемодинамики, структуре почек, биохимических показателях плазмы крови, стрессоустойчивости крыс и возможности их коррекции комплексными фитоадаптогенами (КФА).

Материалы и методы исследования. Эксперимент проведен на 40 крысах-самцах линии Wistar (возраст 9-10 недель, масса 330±20 г), полученных из Северо-Кавказского природоохранного управления “Питомник”. Животных помещали в помещение с контролируемым 12-часовым освещением/темнотой с регулируемой температурой (21 ± 1°C) и влажностью (50-55%). Крыс содержали в клетках (по 5 животных в каждой); доступ к воде и пище adlibitum.

Исследование было одобрено Этического Комитета Института биомедицинских исследований - филиала Владикавказского научного центра Российской академии наук (протокол № 7 от 20 февраля 2019 года). Исследование проводилось в соответствии с этическими стандартами, установленными Хельсинкской декларацией 1964 года.

После адаптационного периода животные были случайным образом разделены на 3 экспериментальные группы: 1 – контрольная, 2 – метаболический синдром, 3 – коррекция метаболического синдрома комплексными фитоадаптогенами. Животных 2,3 группы содержали на диете с высоким содержанием углеводов и жиров в течение 16 недель: 175 г фруктозы, 395 г сгущенного молока с сахарозой, 200 г говяжьего жира, 155 г гранулообразного корма для крыс, 25 г смеси солей Хаббла, Менделя и Вейкмана и 50 г воды на килограмм рациона. Кроме того, питьевая вода для 2,3 группы содержала 25% раствор фруктозы [13]. Крыс из 2-й группы подвергали эвтаназии под анестетиком общего действия «Zoletil» (0.1 мл/100г) после 16 недель кормления для оценки прогрессирования патофизиологических изменений метаболического синдрома. Крысы из 3-й группы после 16 недель нахождения на диете принимали комплексные фитоадаптогены (КФА) в течение 14 дней.

В 1-й группе микроциркуляцию (МЦ), биохимические показатели плазмы крови, степень тревожности и двигательную активность, гистологические исследования проводили один раз в начале эксперимента, во 2-й группе – после 16 недель нахождения на диете с высоким содержанием углеводов и жиров, 3-й группе – после 16 недель диеты и 14 дней применения КФА.

Кровь для биохимического анализа собирали через пункцию сердца. Оценивали уровни триглицеридов, глюкозы, холестерина общего, липопротеинов низкой плотности (ЛПНП), липопротеинов высокой плотности (ЛПВП), аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), креатинина в плазме крови.

Ультразвуковую допплерографию (MM-D-K Minimax-Doppler-K, зонд 25 МГц, Санкт-Петербург, Россия) использовали для оценки параметров микрогемодинамики. Каждую крысу закрепляли на деревянной доске в положении лежа на спине. Измерения проводились в тех областях, где не проходят крупные кровеносные сосуды с целью оценки жидкостного обмена в тканях. MЦ измеряли 3 раза у каждой крысы, затем рассчитывали среднее значение. Оценивались: Vаs – максимальная систолическая скорость кровотока; Vam – средняя скорость кровотока; Vakd – конечная диастолическая скорость кровотока; Qas – максимальная систолическая объемная скорость кровотока; Qam – средняя объемная скорость кровотока; PI – индекс пульсации (индекс Гослинга) и RI – индекс периферического сопротивления (индекс Пурсело), отражающий эластические свойства сосудов.

Экстракт КФА состоит из официальных 70% спиртовых экстрактов солодки голой, родиолы розовой, элеутерококка колючего в соотношении 1:2:1. Дозу рассчитывали с учетом среднесуточного объема потребляемой животными жидкости и коэффициента (х10) для мелких лабораторных животных (0,1 мл/100 г) в сутки – в среднем 0,5 мил на 1 крысу. КФА животные 3-й группы принимали в течение 14 дней после экспериментального моделирования метаболического синдрома.

Тревожность и двигательная активность регистрировались в тесте открытое поле (ОП) и рассчитывались с помощью компьютерной программы мониторинга активности (Realtimer, OpenScience, Россия).

Открытое поле (ОП) представляет собой квадратную арену со сторонами, равными 100 см, и высотой 40 см, разделенную на 25 одинаковых квадратов (40×40×30 см3). Доказано, что тест открытое поле с серой ареной не позволяет выявить межгрупповые различия (стрессоустойчивые, промежуточные, стресснеустойчивые) в поведенческих показателях у животных. На арене серого цвета из-за переходного состояния возникает особый тип стрессового поведения, проявляющийся в виде смешанного тревожно-фобического состояния у животных, независимо от их прогностической устойчивости к стрессу. Исходя из этого, в данном эксперименте животные не были разделены на группы по их устойчивости к стрессу [14]. Исследуемые параметрами: горизонтальная активность (расстояние, выраженное в квадратах), вертикальная активность (количество вертикальных с опорой и без опоры на стенки арены), груминг и акты дефекаций.

В день испытания крыс помещали в комнату для тестирования на 2 часа. Затем каждую крысу помещали в один и тот же угол открытого поля и приподнятого крестообразного лабиринта, ее поведение регистрировали в течение 5 минут. Чтобы избежать присутствия обонятельных сигналов, открытое поле тщательно обрабатывали 20%-ным этиловым спиртом, а затем протирали сухой бумагой после каждого исследования.

Образцы ткани печени и почек фиксировали в 10% параформальдегиде в течение 72 ч, перед дегидратацией и фиксацией в парафиновых блоках для гистологического исследования. Затем готовили срезы с помощью микротома. Срезы окрашивали гематоксилином-эозином (H&E). Препараты изучали при увеличении ×100 под микроскопом Zeiss Axio Lab (Германия).

Анализ полученных данных проводился с использованием программного обеспечения Statistica 10.0 («StatSoft, Inc», Россия). Нормальность распределения переменных проверяли с помощью критерия Шапиро-Уилка. Для сравнения независимых групп использовался критерий Крускала-Уоллиса. Для сравнения зависимых групп использовался критерий Уилкоксона. Данные были представлены в виде Ме(Q1;Q3). P<0,05 было принято как статистически значимое.

Результаты и их обсуждение. При анализе биохимических показателей выявлено, что на фоне диеты с высоким содержанием углеводов и жиров у животных происходит достоверное повышение холестерина общего (р=0,049), триацилглицеридов (р=0,011), ЛПНП (р=0,038), С - реактивного белка (р=0,016), а также снижение креатинина (р=0,011) по отношению к контролю. При коррекции метаболического синдрома комплексными фитоадаптогенами уровни изучаемых показателей находились в пределах доверительного интервала контроля (Таблица 1).

Динамика микроциркуляции во всех экспериментальных группах представлена в Таблице 2.

При метаболическом синдроме произошло достоверное снижение систолической (Vas) (P=0,002), диастолической (Vas) (P=0,003) и средней скоростей (Vam) (P=0,002) кровотока по отношению к контролю. При коррекции метаболического синдрома комплексными фитоадаптогенами происходит достоверное увеличение Vas (Р=0,047) и Vakd (Р=0,046), однако сохраняются достоверные отличия Vas (P=0,046), Vam (Р=0,046) и Vakd (Р=0,027) с диапазоном контрольной группы. При метаболическом синдроме наряду со снижением линейных скоростей кровотока (Vas, Vam, Vakd) закономерным было снижение и объемных скоростей кровотока: Qas (P=0,018) и Qam (Р=0,002).

Анализ объемных скоростей кровотока в группе коррекции комплексными фитоадаптогенами МС выявил тенденции к повышению Qas и Qam.

Метаболический синдром оказывает неблагоприятное влияние на структуру артерий малого сопротивления за счет увеличения толщины артериальной стенки. Это приводит к гипертрофическому процессу – ремоделированию сосудистой стенки. Поэтому при метаболическом синдроме происходит закономерное повышение сосудистого сопротивления, отраженного достоверным повышением PI (Р=0,007) и RI (Р=0,017). При коррекции отмечаются тенденции к снижению PI и RI по отношению к МС.

При анализе горизонтальной активности крыс в течение 3 минут было обнаружено, что крысы с метаболическим синдромом (МС) (группа 2) продемонстрировали тенденцию к снижению по отношению к контролю (группа 1). Количество вертикальных стоек с опорой на стену арены показало достоверные различия с контролем (Р=0,017). При коррекции МС КФА сохранялись достоверные различия с контролем (Р=0,049), но отмечается тенденция к восстановлению (таблица 3).

Анализ достоверным поведенческой активности животных в тесте "Открытое поле" показал, что основным проявлением стресса у животных с метаболическим синдромом являются периоды неподвижности, которые достоверно отличались от значений контроля (Р=0,011). Эта реакция рассматривается как симптом страха.

При коррекции метаболического синдрома комплексными фитоадаптогенами увеличивается горизонтальная и вертикальная двигательная активность по отношению (р<0,05) к метаболическому синдрому (МС) в тесте «Открытое поле», которую характеризует число пересеченных квадратов (локомоторная активность) и количество стоек, что можно рассматривать как тенденцию к восстановлению нарушенной стрессом двигательной активности.

Гистологическое исследование почек крыс с метаболическим синдромом выявило выраженные патологические изменения, особенно в коре почек: аномальные изменения наблюдались в основном в клубочках (G) и проксимальных извитых канальцах и строме почек по сравнению с контролем (Рис. 1C, 1D).

Почки контрольных крыс имели нормальную структуру коры почек (Рис. 1А, 1Б), которая содержала в основном почечные тельца, состоящие из клубочковых капилляров, заключенных в капсулу Боумена. Кроме того, имелось капсулярное пространство между проксимальными (PCT) и дистальными извитыми канальцами (DCT). У крыс с метаболическим синдромом были гипертрофированы (G2) с расширенными клубочковыми капиллярами, в то время как другие – атрофичными (G1). Кроме того, большинство PTC были расширены с потерей границ; их клетки имели вакуолизированную цитоплазму и темные пикнотичные ядра. Кроме того, в различных областях коры почек наблюдались интерстициальные широкие пространства (WS), кровоизлияния (BE) и инфильтрация воспалительными клетками (IS).

Крысы с метаболическим синдромом, получавшие КФА (Рис. 2), показали заметное улучшение гистологического профиля почек, проявляющееся почти нормальными клубочками и PCT без признаков дегенерации (уменьшение интерстициальных широких пространств) и инфильтрации воспалительными клетками.

Полученные результаты можно объяснить следующим образом. Эндотелиальная дисфункция является одним из самых ранних сосудистых изменений, наблюдаемых при ожирении. Это характеризуется снижением доступности и ускоренной деградации NO из-за чрезмерной сосудистой генерации активных форм кислорода (АФК), а также в измененной продукции эндотелиального фермента NO-синтазы (eNOS) [15, 16]. Оксид азота (NO) является основным соединением, участвующим в регуляции сосудистого гомеостаза, вырабатываемый эндотелиальными клетками в результате превращения L-аргинина в цитруллин под действием конститутивного eNOS [17]. Повышенная концентрация или активность аргиназы может уменьшить количество L-аргинина, доступного для eNOS, что снижает выработку NO и вызывает эндотелиальную дисфункцию [18, 19].

Основные адипокины, вырабатываемые жировыми клетками – лептин, резистин и адипонектин [20, 21, 22], могут по-разному влиять на сосудистый гомеостаз. Лептин, основной белок, вырабатываемый адипоцитами, может стимулировать секрецию фактора некроза опухоли – α (TNF-α) и интерлейкина-6 (IL-6), которые, в свою очередь, способствуют эндотелиальной дисфункции посредством их прямой активности или индуцируют увеличение продукции АФК в эндотелиальных клетках [23]. TNF-α может стимулировать выработку АФК путем активации никотинамидадениндинуклеотидфосфатоксидазы (NADPH-оксидазы) или путем активации ядерного фактора транскрипции – kappa B (NF-κB), что приводит к активации макрофагов, миграции и пролиферации гладкомышечных клеток и индукции экспрессии молекул адгезии эндотелиальными клетками [24]. IL-6 увеличивает выработку АФК за счет активации ксантиноксидазы и восстановленной формы NADPH-оксидазы [25, 26].

Комплексные фитоадаптогены влияют на систему гемостаза: они улучшают реологические свойства крови, модулируют систему свертывания крови и фибринолиз за счет увеличения выработки атромбогенных регуляторов – NO, PG El, EETs, простациклина, тем самым нормализуя сосудистый тонус, кровоток за счет расширения сосудов (↑NO) [11].

Стресс является важным этиологическим фактором в развитии метаболического синдрома. Понимание связей и взаимодействий между стрессом, нейробиологической адаптацией и ожирением важно для разработки эффективных стратегий профилактики и лечения ожирения и связанных с ним метаболических заболеваний. Поэтому в нашем исследовании также изучались показатели поведенческой активности животных в норме, при метаболическом синдроме и его коррекции. При коррекции метаболического синдрома комплексными фитоадаптогенами наблюдается тенденция к восстановлению двигательной активности, нарушенной стрессом и метаболическим синдромом.

КФА оказывают выраженный стресслимитирующий эффект: модулируют синтез кортизола и адренокортикотропного гормона при стрессе, повышают уровень нейрогормонов ("гормонов радости" – эндорфинов, дофамина), проявляют нейропротекторную активность, продлевают стадию резистентности триады Селье [27, 28]. Вторичные метаболиты КФА включают адаптацию клеток к стрессу, что называется феноменом гермезиса или прекондиционирования (ashormesisor preconditioning) [29]. Глицирризин солодки голой значительно снижает секрецию фактора некроза опухоли-α, IL-1β и IL-6, уменьшает образование АФК, индуцируя фосфорилирование AMP-активируемой протеинкиназы, что приводит к повышению активности антиоксидантных ферментов [30].

Взаимосвязь между метаболическим синдромом и хроническим заболеванием почек является спорной, но возможные механизмы нарушения функции почек могут включать системное высвобождение медиаторов провоспалительных цитокинов, свободных радикалов и окислительного стресса при МС [31, 32]. Структурные нарушения в почках при метаболическом синдроме были выявлены в ходе нашего исследования. Мы полагаем, что восстановление структуры почек происходит за счет антиоксидантного действия комплексных фитоадаптогенов, а также прямого воздействия на микроциркуляцию, что является предметом наших дальнейших исследований.

Выявлено, что на фоне рациона с высоким содержанием углеводов и жиров у животных наблюдается достоверное повышение общего холестерина (р=0,049), триацилглицеридов (р=0,011), ЛПНП (р=0,038), С -реактивного белка (р=0,016), а также снижение креатинина (р=0,011) относительно контроля. Полученные данные согласуются с патогенезом метаболического синдрома.

В нашем исследовании комплексные фитоадаптогены (Glycyrrhizaglabra, Rhodiotarosea, Acanthopanaxsenticosus) купировали биохимические маркеры метаболического синдрома. Доказано, что потребление листьев элеутерококка колючего позволяет регулировать уровень триглицеридов и холестерина в плазме крови благодаря значительному содержанию клетчатки в листьях, ингибирующей всасывание холестерина или реабсорбцию желчных кислот [33]. Пищевые волокна увеличивают выведение желчных кислот с калом за счет повышения уровня экспрессии мРНК холестерина 7a-гидроксилазы (CYP7al), что ограничивает скорость превращения холестерина в желчные кислоты. Влияние, оказываемое элеутерококком колючим на липидный обмен, обусловлено потенциальной активностью антоцианов, входящих в его состав [6]. Антоцианы уменьшают накопление липидов в печени и повышают чувствительность к инсулину благодаря 5'AMP-активируемой протеинкиназе в периферических тканях [33].

Недавние исследования показывают, что увеличение выработки активных форм кислорода из накопленной жировой массы приводит к усилению системного окислительного стресса, способствуя развитию хронических заболеваний, связанных с ожирением [34]. Вызванный ожирением окислительный стресс в жировой ткани может привести к усилению воспалительных сигналов, нарушению регуляции адипокинов и резистентности к инсулину. Поэтому применение антиоксидантов очень важно при лечении ожирения. Экстракт AS уменьшает накопление АФК (супероксиданионного радикала и H2O2) [35]. Наиболее известный антиоксидант растительного происхождения – родиола розовая – повышает активность эндогенного антиоксидантного ферментативного ответа. Применение экстракта родиолы розовой подавляет активность пролиндегидрогеназы (PDH) и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (G6PDH), что предотвращает окисление пролина, необходимого для образования АТФ, ингибируя адипогенез [36, 37]. Экстракт родиолы и его основное биологически активное вещество тирозол повышают активность супероксиддисмутазы, что приводит к снижению содержания активных форм кислорода в процессе адипогенеза [11].

Глицирризин Glycyrrhizaglabra уменьшает окислительный стресс за счет снижения концентрации свободных жирных кислот, возможно, из-за ингибирования образования АФК при метаболическом синдроме, что, в свою очередь, уменьшает окислительное повреждение кардиолпина и других ферментов, что приводит к улучшению функции митохондрий [38].

Заключение. На основании результатов проведенного эксперимента можно сделать вывод, что параметры микрогемодинамики, биохимические показатели плазмы крови попадают под прямое действие комплексных фитоадаптогенов. Это воздействие носит системный характер и может вызывать реакции со стороны нервной, эндокринной, иммунной систем организма, эндотелия сосудов с изменением содержания или синтеза биологически активных веществ (гормонов, цитокинов, нейротрансмиттеров), что играет существенную роль в коррекции МС. Использование КФА может стать перспективным дополнением в лечении метаболического синдрома и его компонентов (абдомональное ожирение, резистентность к инсулину, дислипидемия, системная дисфункция эндотелия и др.) путем воздействия на центральные патофизиологические звенья и ряд этиологических факторов МС.

 

Информация о финансировании

Финансирование исследования проводилось в рамках комплексной темы ГЗ НИР ИБМИ ВНЦ РАН (2021-2023 гг.).

Список литературы

  1. Saklayen MG. The Global Epidemic of the Metabolic Syndrome. Current Hypertension Reports. 2018;20(2):12. DOI: https://doi.org/10.1007/s11906-018-0812-z

  2. Afshin A, Forouzanfar MH, Reitsma MB, et al. Health effects of overweight and obesity in 195 countries over 25 years. New England Journal of Medicine. 2017;377:13-27. DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1614362

  3. Lebedev P, Peresypkina A, Gustinovich V, et al. Correction of metabolic disturbances by functional food compositions in experimental obesity in CD-1 and agouti-yellow mice. Functional Foods in Health and Disease. 2022;12(1):26-45. DOI: https://doi.org/10.31989/ffhd.v12i1.874

  4. Cariou B, Byrne CD, Loomba R, et al. Nonalcoholic fatty liver disease as a metabolic disease in humans: A literature review. Diabetes, Obesity and Metabolism. 2021;23(5):1069-1083. DOI: https://doi.org/10.1111/dom.14322

  5. Rochlani Y, Pothineni NV, Kovelamudi S, et al. Metabolic syndrome: pathophysiology, management, and modulation by natural compounds. Therapeutic Advances in Cardiovascular Disease. 2017;11(8):215-225. DOI: https://doi.org/10.1177/1753944717711379

  6. Park SH, Lee SG, Kang SK, et al. Acanthopanax senticosus reverses fatty liver disease and hyperglycemia in ob/ob mice. Archives of Pharmacal Research. 2006;29(9):768-776. DOI: https://doi.org/10.1007/BF02974078

  7. Hong JH, Cha YS, Rhee SJ. Effects of the Cellcultured Acanthopanax senticosus Extract on Antioxidative Defense System and Membrane Fluidity in the Liver of Type 2 Diabetes Mouse. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition. 2009;45(1):101-109. DOI: https://doi.org/10.3164/jcbn.08-263

  8. Lee YH, Hsu HC, Kao PC, et al. Augmented Insulin and Leptin Resistance of High Fat Diet-Fed APPswe/PS1dE9 Transgenic Mice Exacerbate Obesity and Glycemic Dysregulation. International Journal of Molecular Science. 2018;19(8):2333. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms19082333

  9. Kobayashi K, Yamada K, Murata T, et al. Constituents of Rhodiola rosea showing inhibitory effect on lipase activity in mouse plasma and alimentary canal. Planta Medica. 2008;74(14):1716-1719. DOI: https://doi.org/10.1055/s-0028-1088318

  10. Panossian A, Seo EJ, Efferth T. Novel molecular mechanisms for the adaptogenic effects of herbal extracts on isolated brain cells using systems biology. Phytomedicine. 2018;50(4):257-284. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phymed.2018.09.204

  11. Арушанян ЭБ, Бейер Э. Растительные адаптогены. Ставрополь: Ставропольский государственный медицинский университет; 2009.

  12. Saito T, Nishida M, Saito M, et al. The fruit of Acanthopanax senticosus improves insulin resistance and hepatic lipid accumulation by modulation of liver adenosine monophosphate-activated protein kinase activity and lipogenic gene expression in high-fat diet-fed obese mice. Nutrition Research. 2016;36(10):1090-1097. DOI: https://doi.org/10.1016/j.nutres.2016.09.004

  13. Panchal SK, Poudyal H, Iyer A, et al.  High-сarbohydrate high-fat diet-induced metabolic syndrome and cardiovascular remodeling in rats. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 2011;57(1):51-64. DOI: https://doi.org/10.1097/FJC.0b013e3181feb90a

  14. Пермяков AA, Елисеева EB, Юдицкий АД, и др. Поведенческие реакции у экспериментальных животных с различной прогностической устойчивостью к стрессу в тесте «открытое поле». Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о земле. 2013;3:83-90.

  15. Flammer AJ, Anderson Т, Celermajer DS, et al. The assessment of endothelial function: from research into clinical practice. Circulation. 2012;126(6):753-767. DOI: https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.112.093245

  16. Virdis A, Taddei S. Endothelial dysfunction in resistance arteries of hypertensive humans: old and new conspirators. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 2016;67(6):451-457. DOI: https://doi.org/10.1097/FJC.0000000000000362

  17. Korokin M, Gudyrev O, Gureev V, et al. Studies to Elucidate the Effects of Furostanol Glycosides from Dioscorea deltoidea Cell Culture in a Rat Model of Endothelial Dysfunction. Molecules. 2019;25(1):169. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25010169

  18. Johnson FK, Peyton KJ, Liu XM, et al. Arginase promotes endothelial dysfunction and hypertension in obese rats. Obesity Research. 2015;23(2):383-390. DOI: https://doi.org/10.1002/oby.20969

  19. Virdis A, Neves MF, Duranti E, et al. Microvascular endothelial dysfunction in obesity and hypertension. Current Pharmaceutical Design. 2013;19(13):2382-2389. DOI: https://doi.org/10.2174/1381612811319130006

  20. Kershaw EE, Flier JS. Adipose tissue as an endocrine organ. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2004;89:2548-56. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2004-0395

  21. Bullo М, Garcia-Lorda P, Megias I, et al. Systemic inflammation, adipose tissue tumor necrosis factor, and leptin expression. Obesity Research. 2003;11:525-531. DOI: https://doi.org/10.1038/oby.2003.74

  22. Korokin M, Gureev V, Gudyrev O, et al. Erythropoietin Mimetic Peptide (pHBSP) Corrects Endothelial Dysfunction in a Rat Model of Preeclampsia. International Journal of Molecular Sciences. 2020;21(18):6759. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21186759

  23. Goldstein BJ, Scalia R. Adiponectin: a novel adipokine linking adipocytes and vascular function. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2004;89(6):2563-2568. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2004-0518

  24. Dodd-o JM, Welsh LE, Salazar JD, et al. Effect of NADPH oxidase inhibition on cardiopulmonary bypass-induced lung injury. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 2004;287(2):927-936. DOI: https://doi.org/10.1152/ajpheart.01138.2003

  25. Virdis A, Masi S, Colucci R, et al. Microvascular Endothelial Dysfunction in Patients with Obesity. Current Hypertension Reports. 2019;21(4):32. DOI: https://doi.org/10.1007/s11906-019-0930-2

  26. Virdis A, Colucci R, Bemardini N, et al. Microvascular Endothelial Dysfunction in Human Obesity: Role of TNF-a. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2019;104(2):341-348. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2018-00512

  27. Panossian A, Seo EJ, Efferth Т. Effects of anti-inflammatory and adaptogenic herbal extracts on gene expression of eicosanoids signaling pathways in isolated brain cells. Phytomedicine. 2019;60:152881. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phymed.2019.152881

  28. Dinel AL, Guinobert I, Lucas C, et al. Reduction of acute mild stress corticosterone response and changes in stress-responsive gene expression in male Balb/c mice after repeated administration of a Rhodiola rosea L. root extract. Food Science and Nutrition. 2019;7(11):3827-3841. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.1249

  29. Panossian AG, Efferth Т, Shikov AN, et al. Evolution of the adaptogenic concept from traditional use to medical systems: Pharmacology of stress- and aging-related diseases. Medical Research Reviews. 2020;41(1):630-703. DOI: https://doi.org/10.1002/med.21743

  30. Xi Z, Chen C, Zhu X, et al. Glycyrrhizin Suppresses RANKL- Induced Osteoclastogenesis and Oxidative Stress Through Inhibiting NF-kB and МАРК and Activating AMPK/Nrf2. Calcified Tissue International. 2018;103(3):324-327. DOI: https://doi.org/10.1007/s00223-018-0425-1

  31. Rochlani Y, Pothineni NV, Kovelamudi S, et al. Metabolic syndrome: pathophysiology, management, and modulation by natural compounds. Therapeutic Advances in Cardiovascular Disease. 2017;11(8):215-225. DOI: https://doi.org/10.1177/1753944717711379

  32. Monserrat-Mesquida M, Quetglas-Llabrés M, Capó X, et al. Metabolic Syndrome is Associated with Oxidative Stress and Proinflammatory State. Antioxidants. 2020;9(3):236. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox9030236

  33. Cha YS, Rhee SJ, Heo YR. Acanthopanax senticosus extract prepared from cultured cells decreases adiposity and obesity indices in C57BL/6J mice fed a high fat diet. Journal of Medicinal Food. 2004;7(4):422-429. DOI: https://doi.org/10.1089/jmf.2004.7.422

  34. Zafar U, Khaliq S, Ahmad HU, et al. Metabolic syndrome: an update on diagnostic criteria, pathogenesis, and genetic links. Hormones. 2018;17(3):299-313. DOI: https://doi.org/10.1007/s42000-018-0051-3

  35. Grandl G, Wolfrum C. Hemostasis, endothelial stress, inflammation, and the metabolic syndrome. Seminars in Immunopathology. 2018;40(2):215-224. DOI: https://doi.org/10.1007/s00281-017-0666-5

  36. Guembe MJ, Femandez-Lazaro CI, Sayon-Orea C, et al. Risk for cardiovascular disease associated with metabolic syndrome and its components: a 13-year prospective study in the RIVANA cohort. Cardiovascular Diabetology. 2020;19(1):195. DOI: https://doi.org/10.1186/s12933-020-01166-6

  37. Lee OH, Kwon YI, Apostolidis E, et al. Rhodiola-induced inhibition of adipogenesis involves antioxidant enzyme response associated with pentose phosphate pathway. Phytotherapy Research. 2011;25(1):106-115. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.3236

  38. Zheng Y, Lee J, Lee EH, et al Combination of Korean Red Ginseng Extract and Glycyrrhiza glabra L. Extract Enhances Their Individual Anti-Obesity Properties in 3T3-L1 Adipocytes and C57BL/6J Obese Mice. Journal of Medicinal Food. 2020;23(3):215-223. DOI: https://doi.org/10.1089/jmf.2019.4660