16+
DOI: 10.18413/2658-6533-2025-11-4-0-3

Связь генетических детерминант SHBG с гормональным профилем больных миомой матки
 

Aннотация

Актуальность: Миома матки представляет собой доброкачественную гормон-зависимую опухоль мышечного слоя матки, поражающую женщин репродуктивного возраста. Генетическим факторам отводится важное значение в возникновении данного новообразования. Гены-кандидаты, ассоциированные с уровнем глобулина, связывающего половые гормоны (SHBG), могут быть вовлечены в патогенетику миомы матки. Цель исследования:Оценитьсвязи полиморфных вариантов генов, ассоциированных с уровнем SHBG, с гормональным статусом пациенток с миомой матки. Материалы и методы:У 83 пациенток с миомой матки, входящих в группу исследования, был изучен гормональный профиль – концентрации в сыворотке крови фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов, эстрадиола, тестостерона, пролактина, прогестерона и проведено генотипирование 9 SNPs, ассоциированных с уровнем SHBG. Программа gPLINK использовалась для поиска ассоциаций SNPs, связанных с уровнем SHBG, с уровнем половых гормонов у больных миомой матки (метод линейной регрессии). Тестировались 4 генетические модели (аллельная/аддитивная/доминантная/рецессивная); в расчеты включались трансформированные значения концентраций половых гормонов в сыворотке крови. Результаты:С уровнем эстрадиола ассоциированы три молекулярно-генетических маркера – rs3779195 BAIAP2L1 [T/A] (7хр.) (pperm=0,020 – 0,048; β=-0,372 – -0,394), rs7910927 JMJD1C [G/T] (10хр.) (pperm=0,027 – 0,048; β=-0,228 – -0,379), rs10454142 PPP1R21 [T/C] (2хр.) (pperm=0,050; β=0,318), лютеинизирующего гормона – rs4149056 SLCO1B1 [T/C] (12хр.) (pperm=0,043 – 0,048; β=0,361 – 0,369), а с концентрацией пролактина (pperm=0,021; β=0,968), прогестерона (pperm=0,050; β=-1,276,) и тестостерона (pperm=0,050; β=-0,744) в сыворотке крови больных, имеющих миому матки, связан полиморфный локус rs8023580 NR2F2 [T/C] (15хр.). Заключение:Установлена вовлеченность генов-кандидатов SHBG в гормональный профиль больных миомой матки.


Введение. Миома матки – это доброкачественное новообразование гладкомышечной ткани (миометрия) матки, чувствительное к половым гормонам [1, 2]. Являясь наиболее распространенной опухолью женской репродуктивной системы, миома матки представляет собой серьезную проблему с точки зрения качества жизни каждой конкретной пациентки, вызывая такие симптомы, как обильные менструальные кровотечения, боли в области таза, бесплодие и др. [3]. Кроме того, экономическое бремя, связанное с лечением данного заболевания, создаёт значительную финансовую нагрузку как для самих женщин, имеющих данный диагноз, так и для системы здравоохранения [4]. В 2022 году в США экономические затраты, направленные на лечение женщин с диагнозом миома матки, выросли до 41,4 млрд. долларов (для сравнения 2010 год – 34,4 млрд. долларов) [5].

Генетические факторы влияют на риск развития миомы матки: по оценкам, полученным на основе близнецового метода, наследуемость заболевания составляет 26-63% [6]. На сегодняшний день проведено 13 полно-геномных исследований (GWAS), которые позволили установить несколько десятков генов-кандидатов, имеющих рисковое значение для миомы матки [6, 7]. Среди этих генов-кандидатов важное место занимают гены половых гормонов [8] гормон-зависимых признаков (возраст менархе) [9, 10].

Важное значение в патофизиологии миомы матки отводится половым гормонам, факторам роста, цитокинам, которые оказывают влияние на пролиферацию гладкомышечных клеток матки и способствуют избыточной выработке внеклеточного матрикса [2, 11, 12]. Традиционно считалось, что основными гормонами, вовлеченными в этиопатогенез миомы матки, являются эстрогены, но недавние исследования показали, что важную роль в этом процессе играют как тестостерон [13], так и прогестерон [14]. Следует отметить, что уровень активных форм половых гормонов (эстрогены, тестостерон) в значительной степени определяется SHBG.

Целью исследования. Оценка связи полиморфных вариантов генов, ассоциированных с уровнем SHBG, с гормональным статусом пациенток с миомой матки.

Материалы и методы исследования. У 83 пациенток с миомой матки, входящих в группу исследования, был изучен гормональный профиль – концентрации в сыворотке крови фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов, эстрадиола, тестостерона, пролактина, прогестерона. В сформированную выборку исследования вошли больные с изолированной миомой матки (n=24;28,92%), сочетанием миомы матки с гиперплазией эндометрия (n=17;20,48%), эндометриозом (n=29;34,94%) и женщины, имеющие сочетание миомы матки с гиперплазией эндометрия и эндометриозом (n=13;15,66%). Таким образом, сочетанные пролиферативные заболевания матки регистрировались у большей половины исследуемых женщин (71,08%).

Девять полиморфных локусов, ассоциированных с уровнем SHBG (rs17496332 [A/G] (1хр.) PRMT6, rs780093 [C/T] (2хр.) GCKR, rs10454142 [T/C] (2хр.) PPP1R21, rs3779195 [T/A] (7хр.) BAIAP2L1, rs440837 [A/G] (8хр.) ZBTB10, rs7910927 [G/T] (10хр.) JMJD1C, 1 rs4149056 [T/C] (12хр.) SLCO1B, rs8023580 [T/C] (15хр.) NR2F2, rs12150660 [G/T] (17хр.) SHBG) были прогенотипированы на амплификаторах CFX-96. Анализ связей полиморфных вариантов генов, ассоциированных с уровнем SHBG, с гормональным статусом пациенток с миомой матки проводился с помощью программы gPLINK (метод линейной регрессии); тестировались четыре генетические модели (аллельная/аддитивная/доминантная/рецессивная) [15]. Для расчетов использовались трансформированные значения концентрации половых гормонов в сыворотке крови (в связи с тем, что их распределение отличалось от нормального). Выполнение расчетов осуществлялось с применением следующих ковариат: возраст, ИМТ, наличие сопутствующих гиперпластических заболеваний матки (эндометриоз и гиперплазия эндометрия). Коррекция на множественные сравнения была выполнена с использованием пермутационного теста [16]: за статистически значимые принимались результаты при рperm≤0,05.

Результаты и их обсуждение. Выполнен анализ показателей гормонального профиля 83 женщин, имеющих миому матки. Средний возраст исследуемой группы был равен 39,26±7,23 лет, среднее значение ИМТ составило 25,95±5,47. Показатели гормонального профиля пациенток с миомой матки приведены в Таблице 1.

Оценка распределения исследуемых 9 SNPs, связанных с уровнем SHBG, среди 83 больных с миомой матки (Табл. 2) показала, что для всех молекулярно-генетических маркеров выполняется закон Харди-Вайнберга (с учетом дополнительно введенной поправки Бонферони на количество анализируемых локусов (9 SNPs), pHWE(Bonf)≥ 0,006 [0,05/9]).

Далее мы изучили связи генетических детерминант SHBG с гормональным профилем больных миомой матки. В таблицах 3-8 отображены полученные результаты. Установлены ассоциации трех полиморфных локусов генов, связанных с SHBG, с уровнем эстрадиола (ESTR) у пациенток с миомой матки (Табл. 3). Полиморфизм rs3779195 BAIAP2L1 [T/A] (7хр.) вовлечен в формирование уровня эстрадиола в рамках трех моделей: аллельной (β=-0,372, р=0,038, pperm=0,048), аддитивной (β=-0,394, р=0,020, pperm=0,021) и доминантной (β=-0,394, р=0,020, pperm=0,020). Молекулярно-генетический маркер rs7910927 JMJD1C [G/T] (10хр.) также связан с концентрацией эстрадиола согласно аддитивной (β=-0,228, р=0,043, pperm=0,048) и доминантной (β=-0,379, р=0,026, pperm=0,027) моделям. С уровнем эстрадиола ассоциирован полиморфизм rs10454142 PPP1R21 [T/C] (2хр.) согласно доминантной модели (β=0,318; р=0,050; pperm=0,050). Следует отметить, что минорные аллели А rs3779195 BAIAP2L1 и Т rs7910927 JMJD1C связаны с более низким содержанием эстрадиола в сыворотке крови пациенток с миомой матки (β<0), а аллель С rs10454142 PPP1R21 наоборот ассоциирован с более высокой концентрацией данного гормона (β>0).

Уровень лютеинизирующего гормона (LH) у больных с миомой матки детерминируется полиморфным локусом rs4149056 SLCO1B1 [T/C] (12хр.) в рамках аллельной (β=0,361, р=0,038, pperm=0,048), аддитивной (β=0,369, р=0,044, pperm=0,046) и доминантной (β=0,369, р=0,044, pperm=0,043) моделей (Табл. 4). Следует подчеркнуть, что аллель С rs4149056 маркирует более высокую концентрацию лютеинизирующего гормона в сыворотке крови у пациенток с миомой матки (β>0).

Молекулярно-генетический маркер rs8023580 NR2F2 [T/C] (15хр.) ассоциирован с уровнем трех гормонов – пролактина (PROL), прогестерона (PG) и тестостерона (TEST) у больных с миомой матки согласно рецессивным моделям (β=0,968, р=0,014, pperm=0,021 (Табл. 5); β=-1,276, р=0,050, pperm=0,050 (Табл. 6); β=-0744, р=0,050, pperm=0,050 (Табл. 7). При этом аллель С rs8023580 NR2F2 является маркером более высокой концентрации только пролактина в сыворотке крови больных, имеющих миому матки (β>0). С концентрацией фолликулостимулирующего гормона (FSH) у пациенток с миомой матки связей полиморфных локусов SHBG не обнаружено (Табл. 8).

Итак, выявлена связь генов-кандидатов SHBG с гормональным профилем больных миомой матки. С уровнем эстрадиола ассоциированы три молекулярно-генетических маркера – rs3779195 BAIAP2L1 [T/A] (7хр.), rs7910927 JMJD1C [G/T] (10хр.), rs10454142 PPP1R21 [T/C] (2хр.), лютеинизирующего гормона – rs4149056 SLCO1B1 [T/C] (12хр.), а с концентрацией пролактина, прогестерона и тестостерона в сыворотке крови больных, имеющих миому матки, связан полиморфный локус rs8023580 NR2F2 [T/C] (15хр.). Высокое содержание эстрадиола, лютеинизирующего гормона, пролактина в сыворотке крови у пациенток с миомой матки маркируют следующие аллельные варианты – С rs10454142 PPP1R21, С rs4149056 SLCO1B1, С rs8023580 NR2F2 соответственно, а с более низкой концентрацией эстрадиола связаны минорные аллели А rs3779195 BAIAP2L1 и Т rs7910927 JMJD1C, прогестерона и тестостерона – минорный аллель С rs8023580 NR2F2.

Половые гормоны играют важную роль в развитии миомы матки. В литературе не описано случаев её развития в препубертатном периоде, а в постменопаузе данная опухоль встречается редко [17]. Основным митогенным фактором для клеток миометрия считаются эстрогены [2]. Миоматозные клетки демонстрируют повышенную активность в ответ на воздействие эстрогенов по сравнению с клетками нормального миометрия [17]. На ряду с этим, все больше появляется данных, что прогестерон может быть вовлечен в патофизиологию миомы матки [14, 18-21]. При этом, следует подчеркнуть, что механизмы, которые лежат в основе патогенеза миомы матки, вызванного действием прогестерона, в значительной степени неизвестны. Выявлено, что экспрессия рецепторов данного гормона (PRs) выше в миоматозных клетках по сравнению с клетками нормального миометрия [14]. Следует отметить, что уровень прогестерона в изученной нами группе больных миомой матки ассоциирован с полиморфным локусом rs8023580 NR2F2 [T/C] (15хр.).

Прогестерон взаимодействует с факторами роста, такими как трансформирующий фактор роста бета-3 (TGF-β3), эпидермальный фактор роста (EGF) и инсулиноподобный фактор роста-1 (IGF-1), тем самым способствуя пролиферации миоматозных клеток [22]. Следует отметить, что экспрессия TGF-β3 увеличивается во время секреторной фазы менструального цикла (основным гормоном которой является прогестерон) [23]. TGF-β3 задействован в большом количестве процессов в организме, в том числе «регулирует» апоптоз, ангиогенез [24]. TGF-β3 является одним из важнейших факторов роста в патофизиологии опухолей [24]. Также, обращает на себя внимание, «хорошая» эффективность лекарственной терапии пациенток с миомой матки селективными модуляторами прогестероновых рецепторов, что служит дополнительным аргументом в пользу предположения о значимой роли прогестерона в патофизиологии данного заболевания [14, 25]. Также, недавние исследования показали, что при лечении улипристала ацетатом (селективный модулятор прогестероновых рецепторов) уровни транскриптов TGF-β1 и TGF-β3 в миоматозных клетоках были заметно снижены, что косвенно указывает на то, что прогестерон опосредует передачу сигналов TGF-β [26, 27, 28].

Кроме того, прогестерон, взаимодействуя как со своими специфическими PRs, так и с негеномными мембранными рецепторами (mPRs/PGRMCs), активирует ряд сигнальных путей (WNT/β-катенин, PI3K/AKT), которые стимулируют рост/пролиферацию миоматозных клеток, способствуют их «выживанию» (за счёт снижения апоптоза), приводят к определённым сосудистым изменениям, улучшающим кровоснабжение опухоли и вызывающим значимую для миомы матки модификацию внеклеточного матрикса (ключевого компонента структуры опухоли) [14, 18-21]. Таким образом, прогестерон регулирует факторы роста, ангиогенные факторы, компоненты внеклеточного матрикса и апоптотические агенты в миоматозных клетках [20].

Очень важно отметить следующий момент: прогестерон является одним из ключевых метаболических предшественников андрогенов и эстрогенов в организме [29]. В работе Ruth et al. были показаны значимые положительные корреляции между уровнем прогестерона и содержанием дегидроэпиандростерон-сульфата (ДГЭАС) (r=0,60), тестостерона (r=0,44), индексом свободных андрогенов (FAI, рассчитывается как тестостерон/SHBG×100) (r=0,39) и, в меньшей степени, концентрацией эстрадиола (r=0,17) [30]. Интересно, что результаты GWAS, полученные Ruth et al., указывают на наличие общих генетических детерминант уровней ДГЭАС (rs148982377) и прогестерона (rs34670419) (полиморфизмы rs148982377 и rs34670419 сильно сцеплены (r2=1,00, D'=1,00), расположены на расстоянии 56 kb друг от друга в области генов CYP3A4/CYP3A7, участвующих в процессе биосинтеза стероидов) [30]. Следует отметить, что описанные в литературе значимые для миомы матки эффекты генетических полиморфизмов, связанные с уровнем SHBG, реализуемые через тестостерон и эстрогены, в определенной степени могут быть опосредованы эффектами их предшественника – прогестерона [31, 32].

Следует отметить, что эстрогены и прогестерон действуют совместно в процессе формирования миомы матки: в клетках опухоли эстрогены стимулируют повышенную экспрессию PRs, что приводит к повышению «чувствительности» миоматозных узлов к сигналам этих гормонов [18]. В экспериментах (использовались животные модели) показано, что уровень экспрессии PRs в опухолевых клетках выше по сравнению с эстрогеновыми рецепторами [33]. Также есть данные, что у женщин с миомой матки, не получавших терапию агонистами гонадотропин-рилизинг-гормона, содержание PRs было значительно выше, чем содержание эстрогеновых рецепторов [34]. Примечательно, что в секреторную фазу менструального цикла митотическая активность миоматозных клеток выше (преобладает прогестерон), чем в пролиферативную фазу (преобладают эстрогены) [35].

Важное значение в патофизиологии миомы матки принадлежит гормонам гипофиза – лютеинизирующий гормон (передняя доля) и пролактин (задняя доля) [36]. Литературные данные свидетельствуют о том, что риск развития миомы матки возрастает у женщин с более высокими показателями концентрации лютеинизирующего гормона в сыворотке крови [37]. Также, согласно результатам иммуногистохимического анализа обнаружено повышенное содержание пролактина в миоматозных клетках по сравнению с клетками нормального миометрия у женщин с миомой матки и клетками миометрия здоровых женщин. Кроме того, пролактин может оказывать влияние на развитие и рост опухоли посредством активации сигнальных путей STAT5/MAPK в клеточных линиях миометрия крысы и человека [38]. Следует отметить, что уровень лютеинизирующего гормона в рассматриваемой нами выборке больных миомой матки ассоциирован с rs4149056 SLCO1B1 [T/C] (12хр.), а с концентрацией пролактина в сыворотке крови больных, имеющих миому матки, связан полиморфный локус rs8023580 NR2F2 [T/C] (15хр.).

Интересно отметить, что данная генетическая панель (девять локусов, ассоциированных с уровнем SHBG) использовалась ранее в исследованиях нашего научного коллектива при изучении рака молочной железы [39], эндометриоза [40]. Согласно результатам, полученным в работе Пономаревой Т.А., с уровнем эстрадиола у больных эндометриозом связаны молекулярно-генетические маркеры rs3779195 BAIAP2L1 (pperm≤0,050, β=-0,282 – -0,318) и rs440837 ZBTB10 (pperm=0,048, β=-0,264), прогестерона – rs780093 GCKR (pperm≤0,050, β=-0,380 – -0,269), rs10454142 PPP1R21 (pperm=0,049, β=0,568), rs8023580 NR2F2 (pperm=0,050, β=-0,289) и rs12150660 SHBG (pperm=0,028, β=-1,071), а с концентрациями тестостерона и дегидроэпиандростерона ассоциирован полиморфный локус rs440837 ZBTB10 (pperm≤0,050, -0,215 и pperm≤0,050, β=-0,266 – -0,334 соответственно) [40]. Основываясь на этих данных, мы можем заключить, что SNPs rs3779195 BAIAP2L1 и rs8023580 NR2F2 связаны с уровнями эстрадиола и прогестерона соответственно, как у больных с эндометриозом [40], так и с миомой матки (материалы нашего исследования). Значимые ассоциации с уровнями тестостерона, прогестерона, эстрадиола с рядом генов-кандидатов половых гормонов (SLC22A10-rs112295236, ZNF789-rs148982377, ZKSCAN5-rs34670419 и др.) установлено и при гиперплазии эндометрия [41].

Заключение. С уровнем половых гормонов у женщин с миомой матки связаны следующие SHBG-значимые молекулярно-генетические маркеры – rs3779195 [T/A] BAIAP2L1, rs7910927 [G/T] JMJD1C, rs10454142 [T/C] PPP1R21 (эстрадиол), rs4149056 [T/C] SLCO1B1 (лютеинизирующий гормон) и rs8023580 [T/C] NR2F2 (пролактин, прогестерон и тестостерон).

 

Информация о финансировании

Финансирование данной работы не проводилось.

 

Список литературы

  1. Bulun SE, Yin P, Wei J, et al. Uterine fibroids. Physiological Reviews. 2025;105(4):1947-1988. DOI: https://doi.org/10.1152/physrev.00010.2024
  2. Yang Q, Ciebiera M, Bariani MV, et al. Comprehensive Review of Uterine Fibroids: Developmental Origin, Pathogenesis, and Treatment. Endocrine Reviews. 2022;43(4):678-719. DOI: https://dx.doi.org/10.1210/endrev/bnab039
  3. Zhang Z, Huang H, Jiang K, et al. Global, regional and national uterine fibroid burdens from 1990 to 2021 and projections until 2050: results from the GBD study. BMC Women's Health. 2025;25(1):423. DOI: https://doi.org/10.1186/s12905-025-03974-y
  4. Harrington A, Bonine NG, Banks E, et al. Direct Costs Incurred Among Women Undergoing Surgical Procedures to Treat Uterine Fibroids. Journal of Managed Care and Specialty Pharmacy. 2020;26(1-a):S2-S10. DOI: https://doi.org/10.18553/jmcp.2020.26.1-a.s2
  5. Li B, Wang F, Chen L, et al. Global epidemiological characteristics of uterine fibroids. Archives of Medical Science. 2023;19(6):1802-1810. DOI: https://doi.org/10.5114/aoms/171786
  6. Kim J, Williams A, Noh H, et al. Genome-wide meta-analysis identifies novel risk loci for uterine fibroids within and across multiple ancestry groups. Nature Communications. 2025;16(1):2273. DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-025-57483-5
  7. Пономаренко МС, Решетников ЕА, Пономаренко ИВ, и др. Молекулярно-генетические факторы формирования миомы матки. Медицинский Совет. 2025;4:21-25. DOI: https://doi.org/10.21518/ms2025-051
  8. Alsudairi HN, Alrasheed AT, Dvornyk V. Estrogens and uterine fibroids: an integrated view. Research Results in Biomedicine. 2021;7(2):156-163. DOI: https://dx.doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-2-0-6
  9. Пономаренко ИВ, Полоников АВ, Чурносов МИ. Полиморфные локусы гена LHCGR, ассоциированные с развитием миомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;10:86-91. DOI: https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.10.86-91
  10. Ponomarenko I, Reshetnikov E, Polonikov A, et al. Candidate Genes for Age at Menarche Are Associated With Uterine Leiomyoma. Frontiers in Genetics. 2021;11:512940. DOI: https://doi.org/10.3389/fgene.2020.512940
  11. Пономаренко ИВ, Чурносов МИ. Современные представления об этиопатогенезе и факторах риска лейомиомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;8:27-32. DOI: https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.8.27-32
  12. Пономаренко МС, Решетников ЕА, Пономаренко ИВ, и др. Этиопатогенетические механизмы развития миомы матки. Акушерство и гинекология. 2024;1:34-41. DOI: https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.241
  13. Lv M, Yu J, Huang Y, et al. Androgen Signaling in Uterine Diseases: New Insights and New Targets. Biomolecules. 2022;12(11):1624. DOI: https://doi.org/10.3390/biom12111624
  14. Ploumaki I, Macri VI, Segars JH, et al. Progesterone signaling in uterine fibroids: Molecular mechanisms and therapeutic opportunities. Life Sciences. 2025;362:123345. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lfs.2024.123345
  15. Purcell S, Neale B, Todd-Brown K, et al. PLINK: a tool set for wholegenome association and population-based linkage analyses. American Journal of Human Genetics. 2007;81(3):559-575. DOI: https://dx.doi.org/10.1086/519795
  16. Che R, Jack JR, Motsinger-Reif AA, et al. An adaptive permutation approach for genome-wide association study: evaluation and recommendations for use. BioData Mining. 2014;7:9. DOI: https://doi.org/10.1186/1756-0381-7-9
  17. Borahay MA, Al-Hendy A, Kilic GS, et al. Signaling Pathways in Leiomyoma: Understanding Pathobiology and Implications for Therapy. Molecular Medicine. 2015;21(1):242-256. DOI: https://doi.org/10.2119/molmed.2014.00053
  18. Machado-Lopez A, Simón C, Mas A. Molecular and Cellular Insights into the Development of Uterine Fibroids. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(16):8483. DOI: https://dx.doi.org/10.3390/ijms22168483
  19. Ali M, Ciebiera M, Vafaei S, et al. Progesterone Signaling and Uterine Fibroid Pathogenesis; Molecular Mechanisms and Potential Therapeutics. Cells. 2023;12(8):1117. DOI: https://doi.org/10.3390/cells12081117
  20. Szucio W, Bernaczyk P, Ponikwicka-Tyszko D, et al. Progesterone signaling in uterine leiomyoma biology: Implications for potential targeted therapy. Advances in Medical Sciences. 2024;69(1):21-28. DOI: https://doi.org/10.1016/j.advms.2024.01.001
  21. Omar M, Laknaur A, Al-Hendy A, et al. Myometrial progesterone hyper-responsiveness associated with increased risk of human uterine fibroids. BMC Women's Health. 2019;19(1):92. DOI: https://doi.org/10.1186/s12905-019-0795-1
  22. Górski K, Zgliczyński S, Stelmachowska-Banaś M, et al. Uterine fibroids in women diagnosed with acromegaly: a systematic review. Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 2024;25(4):773-781. DOI: https://doi.org/10.1007/s11154-024-09883-z
  23. Islam MS. Advances in uterine fibroid research: linking progesterone and the transforming growth factor-β signaling pathway. Fertility and Sterility. 2024;122(2):272-273. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2024.05.004
  24. Bariani MV, Cui YH, Ali M, et al. TGFβ signaling links early life endocrine-disrupting chemicals exposure to suppression of nucleotide excision repair in rat myometrial stem cells. Cellular and Molecular Life Sciences. 2023;80(10):288. DOI: https://doi.org/10.1007/s00018-023-04928-z
  25. Simon JA, Catherino W, Segars JH, et al. Ulipristal acetate for treatment of symptomatic uterine leiomyomas: a randomized controlled trial. Obstetrics and Gynecology. 2018;131(3):431-439. DOI: https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000002462
  26. Milewska G, Ponikwicka-Tyszko D, Bernaczyk P, et al. Functional evidence for two distinct mechanisms of action of progesterone and selective progesterone receptor modulator on uterine leiomyomas. Fertility and Sterility. 2024;122(2):341-351. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2024.02.046
  27. Lewis TD, Malik M, Britten J, et al. Ulipristal acetate decreases active TGF-β3 and its canonical signaling in uterine leiomyoma via two novel mechanisms. Fertility and Sterility. 2019;111(4):683-684. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.12.026
  28. Ciebiera M, Włodarczyk M, Wrzosek M, et al. Ulipristal acetate decreases transforming growth factor β3 serum and tumor tissue concentrations in patients with uterine fibroids. Fertility and Sterility. 2018;109(3):501-507. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.11.023
  29. Sinnott-Armstrong N, Naqvi S, Rivas M, et al. GWAS of three molecular traits highlights core genes and pathways alongside a highly polygenic background. eLife. 2021;10:e58615. DOI: https://doi.org/10.7554/eLife.58615
  30. Ruth KS, Campbell PJ, Chew S, et al. Genome-wide association study with 1000 genomes imputation identifies signals for nine sex hormone-related phenotypes. European Journal of Human Genetics. 2016;24:284-290. DOI: https://doi.org/10.1038/ejhg.2015.102
  31. Ponomarenko M, Reshetnikov E, Churnosova M, et al. Obesity/Overweight as a Meaningful Modifier of Associations Between Gene Polymorphisms Affecting the Sex Hormone-Binding Globulin Content and Uterine Myoma. Life. 2025;15(9):1459. DOI: https://doi.org/10.3390/life15091459
  32. Ponomarenko M, Reshetnikov E, Churnosova M, et al. Genetic Variants Linked with the Concentration of Sex Hormone-Binding Globulin Correlate with Uterine Fibroid Risk. Life. 2025;15(7):1150. DOI: https://doi.org/10.3390/life15071150
  33. Mozzachio K, Moore AB, Kissling GE, et al. Immunoexpression of Steroid Hormone Receptors and Proliferation Markers in Uterine Leiomyoma and Normal Myometrial Tissues from the Miniature Pig, Sus scrofa. Toxicologic Pathology. 2016;44(3):450-457. DOI: https://doi.org/10.1177/0192623315621414
  34. Khan KN, Fujishita A, Koshiba A, et al. Expression profiles of E/P receptors and fibrosis in GnRHa-treated and -untreated women with different uterine leiomyomas. PLoS ONE. 2020;15(11):e0242246. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0242246
  35. Ali M, Al-Hendy A. Selective progesterone receptor modulators for fertility preservation in women with symptomatic uterine fibroids. Biology of Reproduction. 2017;97(3):337-352. DOI: https://doi.org/10.1093/biolre/iox094
  36.  Stewart EA, Nowak RA. Uterine Fibroids: Hiding in Plain Sight. Physiology. 2022;37(1):16-27. DOI: https://doi.org/10.1152/physiol.00013.2021
  37. Baird DD, Kesner JS, Dunson DB. Luteinizing hormone in premenopausal women may stimulate uterine leiomyomata development. Journal of the Society for Gynecologic Investigation. 2006;13(2):130-135. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jsgi.2005.12.001
  38. DiMauro A, Sege C, Minor B, et al. Prolactin is Expressed in Uterine Leiomyomas and Promotes Signaling and Fibrosis in Myometrial Cells. Reproductive Sciences. 2022;29(9):2525-2535. DOI: https://doi.org/10.1007/s43032-021-00741-w
  39. Пасенов КН. Особенности ассоциаций SHBG-связанных генов с раком молочной железы у женщин в зависимости от наличия наследственной отягощенности и мутаций в генах BRCA1/CHEK2. Научные результаты биомедицинских исследований. 2024;10(1):69-88. DOI: https://doi.org/10.18413/2658-6533-2024-10-1-0-4
  40. Пономарева ТА. Генетические варианты глобулина, связывающего половые гормоны, и гормональный профиль больных генитальным эндометриозом. Научные результаты биомедицинских исследований. 2025;11(1):75-90. DOI:  https://doi.org/10.18413/2658-6533-2025-11-1-0-4
  41. Чурносов ВИ. Ассоциации полиморфных локусов генов-кандидатов с уровнем половых гормонов у больных гиперплазией эндометрия. Научные результаты биомедицинских исследований. 2025;11(2):243-262. DOI: https://doi.org/10.18413/2658-6533-2025-11-2-0-3