16+
DOI: 10.18413/2658-6533-2026-12-3-0-4

Вторичные метаболиты Reynoutria sachalinensis – потенциальный резерв фармакологических препаратов (обзор)
 

Aннотация

Актуальность: Литературный обзор посвящен многолетнему травянистому растению Reynoutria sachalinensis семейства Polygonaceae. Во многих странах данный вид считается инвазивным и ведется поиск не только методов борьбы с ним, но и вариантов его использования, как лекарственного, медоносного, декоративного, пищевого и кормового растения. Цель исследования:Систематизировать современные научные данные в области химического состава R. sachalinensis, механизмов действия его основных биологически активных соединений и обоснованию их терапевтического использования. Материалы и методы:Для достижения поставленной цели проводился анализ источников отечественной и иностранной литературы по данной проблеме за период с 2000 г. по 2025 г. Использовались базы данных научных электронных библиотек Google Scholar, eLibrary, PubMed, Web of Science, ScienceDirect, Scopus. Результаты:В обзоре обобщены результаты исследований в области изучения химического состава, биологической активности как различных экстрактов, так и индивидуальных соединений, а также механизмов действия основных биологически активных веществ R. sachalinensis. В настоящее время из данного вида выделено и идентифицировано более 277 соединений. Метаболиты R. sachalinensis относятся к фенольным соединениям, тритерпеноидам, азотсодержащим соединениям, пигментам и алифатическим спиртам. В исследованиях последних десятилетий показано, что суммарные экстракты и высокоочищенные фракции соединений из различных органов R. sachalinensis обладают антиоксидантной, противовирусной, фунгицидной и противоопухолевой активностью, ингибирующим действием на β-глюкозидазу, ацетилхолинэстеразу, ксантиноксидазу и нейропротективными свойствами. Знание пространственной структуры комплексов клеточных белков, мембранных рецепторов и растительных вторичных метаболитов, их лигандов раскрывает механизм действия биологически активных веществ, но не исключает необходимости его подтверждения и проведения эксперимента in vitro иin vivo. Заключение:Растительное сырье R. sachalinensis можно рассматривать как источник биологически активных метаболитов, имеющих широкий спектр использования


Введение. Лекарственные растения играют важную роль в мировом здравоохранении и глобальной экономике [1]. В настоящее время индустрия фитотерапии переживает активный рост [2]. Только в США более 25% рецептурных лекарств содержат активные вещества, полученные из растений [3]. В России доля рынка фитопрепаратов меньше по сравнению со странами Евросоюза [4, 5, 6]. При этом Российская Федерация обладает определенным потенциалом для производства фитопрепаратов [7, 8]. Исследования, проводимые в области поиска и изучения механизма действия вторичных метаболитов лекарственных растений, являются актуальными [9].

Reynoutria sachalinensis (F. Schmidt) Nakai (син. Polygonumsachalinensis F. Schmidt ex Maxim., Fallopiasachalinensis (F. Schmidt) Ronse Decr.) Рейнутрия сахалинскаямноголетнее травянистое растение высотой до 4 метров с крупными овально-продолговатыми, с сердцевидным основанием и острой или заостренной верхушкой листьями, длина которых варьирует от 15 до 45 см. [10, 11, 12]. Данный вид принадлежит семейству Polygonaceae [13]. Корневище утолщенное, ветвистое. Цветки мелкие, собраны в короткие, плотные метелки длиной до 10 см. В природе данный вид распространен на Курильских островах, островах Сахалин, Хоккайдо, Хонсю, Корейском полуострове [11, 14]. Вторичный ареал располагается на территории США, Индии, Австралии, Африки и Европы [11]. Для данного вида характерна полиплоидия. Встречаются популяции с наличием тетраплоидного (2n=44), гексаплоидного (2n=66), октоплоидного (2n = 88) и додекаплоидного числа хромосом (2n=132) [10, 11, 15].

В 19 веке данный вид был завезен в Европу в качестве декоративного растения [12]. R. sachalinensis встречается на территории 29 европейских стран, в 18 из них считается инвазивным видом [10, 16]. Данный вид не требователен к составу почв и способен расти практически в любых условиях, образуя монодоминантные заросли [15, 17]. Произрастает по берегам рек, на опушках леса, вблизи дорог, на свалках, строительных площадках, железнодорожных насыпях и заброшенных полях. Ведется поиск мер борьбы с этим растением, а также поиск путей его использования [18].

R. sachalinensis используется как лекарственное, медоносное, декоративное, пищевое и нетрадиционное кормовое растение [19]. Возможно его применение в фиторемедиации загрязненных территорий, в пищевой и бумажной промышленности [20, 21]. Экстракты данного вида используют в качестве стимулятора роста растений и фунгицида [22]. Спиртовое извлечение из листьев оказывает стимулирующее действие при прорастании семян и росте растений пшеницы Triticum aestivum L. [23]. Из экстракта растений R. sachalinensis получен биопестицид [24]. Однако в настоящее время он не был зарегистрирован ни в одной стране ЕС [25]. В Японии и Китае применяется в традиционной медицине [26].

Цель исследования. Данный литературный обзор посвящен систематизации современных научных данных в области химического состава R. sachalinensis, изучению механизмов действия его основных биологически активных соединений и обоснованию их терапевтического использования.

Материалы и методы исследования. Для информационно-аналитического поиска использовали научные данные, размещенные на электронных ресурсах Google Scholar, eLibrary, PubMed, Web of Science, ScienceDirect, Scopus. Поиск осуществляли за период с 2000 г. по 2025 г. по ключевым словам: «Reynoutria sachalinensis», «Fallopia sachalinensis», «giant knotweed», «рейнутрия сахалинская», «ботаническое описание рейнутрии сахалинской», «экстракт рейнутрии сахалинской», «фенольные соединения рейнутрии сахалинской», «химический состав рейнутрии сахалинской», «фармакологическое действие рейнутрии сахалинской», «цитотоксичность», «противовирусное действие», «антибактериальное действие», «противоопухолевое действие».

Профиль биоактивных соединений

Фитохимические исследования рода Reynoutria выявили наличие более 277 химических компонентов [27]. R. sachalinensis содержит большое количество разнообразных биологически активных веществ: фенольные соединения (антрахиноны, стильбены, флавоноиды, фенилпропаноиды, проантоцианидины, гидролизуемые таннины, фенольные кислоты), каротиноиды, хлорофиллы, тритерпеноиды, азотсодержащие соединения и алифатические спирты (табл. 1) [28, 29].

По данным Nawrot-Hadzik I. фракция этилацетата наиболее богата полифенолами (640,7 мг/г) и таннинами (528,3 мг/г) [30]. Содержание стильбенов в корневище R. sachalinensis составляет до 27,04 мг/г, в том числе содержание транс-полидатина – 17,06 мг/г [31]. В молодых весенних побегах накапливается 154 мг/кг ресвератролозида, 64 мг/кг сухой массы пицеида и 68 мг/кг сухой массы ресвератрола [32]. Ваникозид В и С в корнях накапливается до 21,5 и 6,5 мг/г сухого вещества соответственно, а стеблях – 14,3 и 0,6 мг/г сухого вещества [31]. По данным Stafiniak M. с соавторами для R. sachalinensis характерно более высокое содержание гидропиперозида, ваникозидов, чем в R. japonica и R. x bohemica [18]. В надземной части преобладают неохлорогеновая кислота и рутин [33]. Содержание галловой кислоты в надземной части достигает 21,99 мг/кг, что в 3,3 больше по сравнению с корневищем [33]. В листьях R. sachalinensis кверцитрин является основным соединением (до 13,96 мг/г сухого вещества) [31]. По данным Vrchotova N. с соавторами содержание катехина и эпикатехина в молодых весенних побегах достигает 167 и 674 мг/кг сухой массы соответственно [32].

В настоящее время основные исследования направлены на изучение фитохимического состава корневища [29].

Молекулярный докинг вторичных метаболитов R. sachalinensis

Зная пространственную структуру комплексов клеточных белков, мембранных рецепторов и растительных вторичных метаболитов, их лигандов можно предположить механизм их действия, используя молекулярный докинг.

Эфиры фенилпропаноиддисахарида, присутствующие у Reynoutria с преобладающим количеством ваникозидов В и А (рис. 1), до сих пор остаются малоизученными химическими веществами с точки зрения их биологической активности.

Для оценки возможного противоопухолевого действия проводили молекулярный докинг ваникозидов А и В с активным центром киназы BRAFV600E (ключевой онкоген с мутацией, неправильный сигналлинг BRAF из-за мутации V600E может приводить к избыточной клеточной пролиферации и к ошибочной устойчивости к апоптозу) и MEK-1 (МАР-extracellular regulated kinase) (программное обеспечение GOLD, версия 5.7.2, Кембриджский центр кристаллографических данных, Кембридж, Великобритания) [43] (табл. 2).

Ваникозиды А и В образуют четыре водородные связи с остатками киназы BRAF. Среди них присутствует взаимодействие с остатком Asp594, и это является решающим взаимодействием в случае исходного лиганда. Известно, что аминокислотные остатки Lys483 и Cys532 являются важными для связывания потенциальных ингибиторов BRAF [43].

Ваникозид B взаимодействует с ними обоими, тогда как ваникозид A только с Cys532. В случае МЕК1 оба ваникозида образуют пять водородных связей с этой киназой. Эти результаты позволяют предположить, что оба ваникозида можно рассматривать как потенциальные ингибиторы этих мишеней, а также проводить дальнейшие экспериментальные испытания [44].

Аналогичный эффект наблюдался и в отношении главной протеазы MproSARS-CoV-2 (3CL pro), которая признана ключевой мишенью для профилактики и лечения инфекционных заболеваний, вызванных коронавирусами.

Биологически активные соединения R. sachalinensis были пристыкованы к сайту связывания протеазы SARS-CoV-2 и рассчитано среднеквадратичное отклонение с наилучшим положением и закреплением лиганда (RMSD = 1.6369 Å). В таблице 3 представлены лучшие ингибиторы протеазы (общие взаимодействия с лигандом отмечены жирным шрифтом), балл стыковки больше 90. Известно, чем больше водородных и π-связей, тем устойчивее комплекс [43].

Недавние исследования с использованием молекулярного докинга показали, что стильбены в целом и ресвератрол в том числе, могут быть использованы для лечения COVID-19 [46].

Стильбены, действуя как ингибитор на рецептор ACE2 (ангиотензинпревращающий фермент II), который является функциональным клеточным рецептором для коронавирусов SARS-CoV и SARS-CoV-2 (COVID-19), а также HCoV-NL63 [47, 48, 49], предотвращают образование комплекса S1:ACE2 и проникновение вируса в клетки хозяина.

Исследования молекулярного докинга, проведенные Maroli N. [50], показали, что процианидины также могут быть потенциальными ингибиторами Mpro SARS-CoV-2, а также ACE2 [51, 52, 53, 54, 55].

Биологическая активность экстрактов R. sachalinensis

Спиртовые и водные экстракты R. sachalinensis традиционно используют в странах Восточной Азии для лечения артралгий, кашля, желтухи, аменореи, ожогов, травм, карбункулов и язв [35]. А другой близкий вид семейства Polygonaceae – R. japonica на протяжении многих лет применяют при различных хронических заболеваниях из-за его антиоксидантных, противовоспалительных и противоопухолевых свойств [56]. Вторичные метаболиты R. sachalinensis могут стать источниками для разработки компонентов различных терапевтических препаратов (табл. 4).

Антиоксидантная активность и нейропротекторное действие. Описана антиоксидантная активность метанольных экстрактов различных органов R. sachalinensis [39]. Исследование антиоксидантной активности методом ВЭЖХ показало, что и надземная часть, и корни имеют антиоксидантный потенциал, который составляет 3,85±0,09 и 3,59±0,09 мг/г в эквиваленте Тролокса соответственно [33]. За антиоксидантную активность отвечают различные биологически активные соединения, содержащиеся в данном виде. Так, выделенные из метанольного экстракта цветков R. sachalinensis флавоноиды кверцетин-3-О-α-L-арабинофуранозид, кверцетин-3-О-β-D-галактопиранозид и кверцетин-3-О-β-D-глюкуронопиранозид показали значительную антиоксидантную активностью со значениями IC50 64,3, 54,7 и 46,2 мкМ (удаление DPPH), значениями IC50 6,0, 6,7 и 4,4 мкМ (удаление супероксидных радикалов) и значения IC50 3,8, 3,2 и 5,4 мкМ против окисления липопротеинов низкой плотности соответственно [40]. Эмодин, фисцион, квестин и их производные также обладают антиоксидантной активностью [31]. Nawrot-Hadzik I. с соавторами показал, что проантоцианидины, представляющие собой фенольные полимеры, в основном состоящие из субъединиц флаван-3-ола, также вносят значительный вклад в общую антиоксидантную способность [30], что может быть обусловлено их восстановительной способностью, связанной с лабильными фенольными гидроксильными группами [61].

В настоящее время профилактика с помощью антиоксидантов является одной из самых инновационных терапевтических стратегий при нейродегенеративных заболеваниях [62]. Eom М. с соавторами также связывают нейропротекторную активность, таких соединений как 1-деканол, кампестерол, пероксид эргостерола, кверцетин и изокверцитрин, выделенных из R. sachalinensis, с антиоксидантной способностью, так как эти соединения снижают уровень активных форм кислорода, а также показали антиоксидантную активность с радикалом DPPH и в анализе поглощения H2O2 [35].

Известно, что ключевую роль в развитии болезни Альцгеймера играет избыточная продукция и накопление β-амилоидного пептида, являющегося основным компонентом сенильных бляшек в ткани мозга. Данный пептид имеет широкий спектр нейротоксических эффектов, включающий окислительный стресс, митохондриальную дисфункцию, нарушение работы ионного транспорта, синаптическую дисфункцию, апоптоз нейронов [63, 64].

В работе Li W. с соавторами показано, что эмодин, который является производным антрахинона и характерен для многих видов семейства Polygonaceae, может быть перспективным кандидатом для лечения болезни Альцгеймера, за счет способности данного соединения препятствовать апоптозу клеток, вызванному β-амилоидом 1-42 in vitro, и β-амилоидом in vivo у трансгенных мышей APP/PS1. Авторы связывают эти эффекты также с антиоксидантной активностью эмодина [49]. Антиоксидантные свойства катехинов, содержащиеся в листьях, стеблях и корнях рейнутрии сахалинской, защищают от нейродегенеративных заболеваний [65] за счет удаления свободных радикалов и регулирования реакции на окислительный стресс [66]. Эпигаллокатехингаллат способствует нейрогенезу гиппокампа взрослого человека, а также играет важную роль в развитии нервной системы и в формировании связей между нейронами [67].

Противовирусная активность. Противовирусная активность R. sachalinensis во многом обусловлена содержанием в различных органах данного вида таких соединений, как эмодин, ресвератрол, ваникозид В и катехинов. Противовирусное действие ресвератрола связано с подавлением внутриклеточного сигнального пути, центральным компонентом которого является транскрипционный фактор NF-κB (nuclear factor κB) [68]. Активность эпигаллокатехин галлата связывают с наличием пирогаллольных и галлоильных фрагментов [69].

Вирус простого герпеса человека. Для эмодина, извлеченного из корневища R. japonica, была обнаружена ингибирующая активность в отношении вируса простого герпеса человека типа 1 у морских свинок [70]. Эпикатехин и эпикатехин-3-галлат также показали высокий уровень ингибирующей активности [71]. Ресвератрол и фитоалексин, относящиеся к стильбенам, могут подавлять репликацию вирусов путем снижения количества вирусных адгезивных клеток и ингибирования реактивации вируса [72]. Установлено, что ресвератрол в отношении вируса простого герпеса типа 1 влияет на экспрессию вирусных генов, синтез ДНК в эпителиальных клетках и регулирует путь серин/треонинкиназа AMP-активируемая протеинкиназа-Sirtuin1 (SIRT1), предотвращая апоптоз в нейронах [73].

Вирус Эпштейна-Барр (гаммагерпесвирус человека 4). Эпигаллокатехин галлат при использовании в концентрациях выше 50 M эффективно подавляет экспрессию литических белков вируса Эпштейна-Барр, но не влияет на экспрессию EBNA-1 [74]. Спиртовой экстракт другого близкого вида (R. japonica) ингибирует литический цикл и снижает выработку вирусных частиц [75].

Вирус Коксаки B4. В работе Liu Z. с соавторами показано, что эмодин, выделенный из R. japonica, в зависимости от концентрации и времени способен ингибировать проникновение и репликацию вируса Коксаки B4 [76].

Короновирусы. Как известно инфекция SARS-CoV-2 начинается с проникновения вируса в клетку посредством взаимодействия вирусного белка Spike (S) с рецептором клеточной поверхности ACE2 (ангиотензинпревращающий фермент 2) и праймирования белка S клеточной протеазой TMPRSS2 (трансмембранная сериновая протеаза 2) [77]. Протеолитическая обработка белка S TMPRSS2 приводит к образованию фрагментов S1 и S2, которые остаются нековалентно связанными. Полипептид S1 взаимодействует с рецептором ACE2 через домен связывания рецептора (RBD), а полипептид S2 облегчает слияние вируса с клеточной мембраной [78]. Интернализованный вирус транслирует РНК-геном в полипептид, за которым следует высокорегулируемая и скоординированная протеолитическая обработка основной протеазой (Mpro/3CLpro), химотрипсин-подобной протеазой, и расщепление субстратных полипептидов [79, 80]. Блокирование процесса созревания вирусных полипротеинов нарушает репликацию вируса в клетках-хозяина [81], поэтому вирусные и клеточные белки представляют собой мишени, воздействуя на которые становится возможным лечение и профилактика SARS-CoV-2.

Установлено значительное ингибирование Mpro SARS-CoV-2 при действии ацетонового экстракта R. sachalinensis, характеризующегося высоким содержанием процианидинов и фенилпропаноидных эфиров дисахарида [45, 51, 82, 83].

Бутанольные фракции R. sachalinensis показали ингибирование Mpro SARS-CoV-2 с IC50 = 4,031 мкг/мл [45]. В работе Yang M. с соавторами показано, что ресвератрол способен значительно ингибировать репликацию SARS-CoV-2 с EC50 = 4,48 мкМ [84]. Водные и этанольные экстракты R. japonicaзначительно ингибируют проникновение псевдовируса SARS-CoV-2 за счет блокирования взаимодействия белка ACE2/S и ингибирования протеазы 3CL [85].

Эмодин способен ингибировать взаимодействие спайкового белка SARS-CoV и человеческого ACE2 [52] и нарушать выход вируса SARS-CoV и HCoV-OC43, благодаря блокировке ионного канала, посредством которого происходит высвобождение вируса из инфицированной клетки [86].

Эпигаллокатехин галлат отвечает за подавление активности главной протеазы в SARS-CoV-2 и репликации вируса in vitro [87]. Ваникозид В также оказывает умеренное ингибирующее действие на протеазы вируса SARS-CoV-2 [45].

Установлено, что олигомерные проантоцианидины обладают ингибирующей активностью в отношении протеиназы TMPRSS2 [88].

Вирус иммунодефицита человека. Ресвератрол и эмодин-8-O-β-D-глюкозид способны ингибировать образование синцития, вызванное ВИЧ-1 с EC50 = 4,37 и 11,29 мкг/мл соответственно [89, 90]. Эпигаллокатехин галлат является ингибитором обратной транскриптазы ВИЧ, ингибирует проникновение ВИЧ в клетки-мишени и вызывает снижение способности вирионов инфицировать клетки [91].

Вирус гепатита C. В работе Calland N. с соавторами показано, что (2)-эпигаллокатехин-3-галлат, эпикатехин-3-галлат и эпигаллокатехин обладают противовирусной активностью HCV на ранней стадии жизненного цикла вируса [92]. Установлено, что (-)-эпигаллокатехин-3-галлат подавляет вирус, прикрепляясь к целевой клетке и предотвращая распространение инфекции на другие клетки [92].

Энтеровирус. Эпигаллокатехин галлат и галлокатехин галлат способны подавлять репликацию энтеровируса EV71. Установлено, что ваникозид B защищает клетки RD (эмбриональная рабдомиосаркома) от EV-A71 и EV-D68 при концентрации 20 мкМ [45], а также является ингибитором активности фермента, необходимого для репликации EV.

Полиовирус. В работе Arita М. указывается, что ваникозид В, выделенный из метанольного экстракта корня R. sachalinensis, обладает антиполиовирусным действием [46, 93], ингибируя фермент PI4KB (фосфатидилинозит-4-киназа бета), который является его прямой мишенью [93]. Однако антипролиферативный эффект на лимфоциты [94] и летальность у мышей [95] вызывают сомнения по поводу безопасности использования соединния in vivo.

Противоопухолевая активность и цитотоксическое действие. Известно действие ваникозидов А и В, выделенных из корневищ Reynoutria sachalinensis, на две линии клеток меланомы человека (амеланотическая – C32 и меланотическая – A375, которые содержали эндогенную мутацию BRAFV600E) и две нормальные клеточные линии человека (кератиноциты (HaCaT) и фибробласты). Ваникозид А (5,0 мкМ) показал более сильную цитотоксичность в отношении клеточной линии C32, при этом жизнеспособность клеток снизилась на 45% уже после 72-часовой инкубации, что возможно объясняется дополнительной ацетильной группой в молекуле [43].

Механизм действия ваникозидов на клетки меланомы более сложный, чем просто индукция апоптоза [60]. В некоторых случаях, таких как повреждение клеток кислородными радикалами, два механизма гибели клеток – апоптоз и некроз – происходят одновременно. Кроме того, ваникозиды, как и другие полифенолы, могут способствовать окислительному стрессу в раковых клетках [60].

Ваникозиды вызывают гибель клеток меланомы в концентрациях от 2,5 до 50 мкМ, не нанося вреда первичной линии фибробластов. Линия клеток кератиноцитов HaCaT более чувствительна к ваникозидам, чем фибробласты, показывая явное снижение жизнеспособности после инкубации с 25 мкМ ваникозида А, но без измеримой флуоресценции, связанной с гибелью клеток. Поэтому необходимы дальнейшие исследования, чтобы гарантировать селективность в отношении раковых клеток и безопасность [43].

В настоящее время известно, что ваникозиды проявляют цитотоксичность и на клеточную линию MCF (Michigan Cancer Foundation – эпителиоподобная клеточная линия, полученная из инвазивной аденокарциномы протоков молочной железы человека) при субмикромолярных дозах [96]. А Ваникозид B ингибирует двухэтапный канцерогенез опухоли кожи у мышей, индуцированной 12-O-тетрадеканоилфорбол-13-ацетатом, путем подавления активности фермента циклин-зависимой киназы [97].

Прочие виды активности. Фенилпропаноидные гликозиды ваникозидов A и B обладают ингибирующим действием на β-глюкозидазу [40, 58], метанольный экстракт и изокверцитрин ингибируют активность ацетилхолинэстеразы и α/β-глюкозидазы [35, 39], метанольные экстракты корней и листьев – активность ксантиноксидазы [98], 3-О-β-D-галактопиранозид кверцетина, лапатозид D и N-транс-ферулоилтирамин – активность акарбозы [39], торахризон и торахризонглюкозид способны ингибировать α-амилазу [31]. Эмодин, фисцион, квестин и их производные обладают противомикробной и противовоспалительной активностью [31].

Таким образом, растительное сырье вида R. sachalinensis можно рассматривать как источник биологически активных метаболитов, имеющих подтвержденный широкий спектр использования, в том числе противовирусное и противоопухолевое средство, но необходимы дальнейшие работы по выделению и наработке значимых вторичных метаболитов и оценке их механизма действия invitro и invivo.

Информация о финансировании

Работа выполнена согласно государственному заданию в ФГБНУ ВИЛАР «Исследование механизма синтеза конденсированных таннинов лекарственных растений и их биоактивные свойства FGUU-2025-0005».

Список литературы

  1. Ahmadu T, Ahmad K. An Introduction to Bioactive Natural Products and General Applications. In: Pal D, Nayak AK, editors. Bioactive Natural Products for Pharmaceutical Applications. Advanced Structured Materials. Cham: Springer; 2021. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-54027-2_2
  2. Bhattacharjee B, Sandhanam K, Ghose S, et al. Market Overview of Herbal Medicines for Lifestyle Diseases. In: Dhara AK, Mandal SC, editors. Role of Herbal Medicines. Singapore: Springer; 2023. DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-99-7703-1_30
  3. Bareetseng S. The worldwide herbal market: trends and opportunities. Journal of Biomedical Research and Environmental Sciences. 2022;3(5):575-584. DOI: https://doi.org/10.37871/jbres1482
  4. Коротченко СЕ, Побыванец РИ, Карташов ЕВ. Современные тенденции и возможности производства растительных лекарственных препаратов в России. В: Волков АА, Тюрина ЕА, Усова МВ, редакторы. Новая экономика, бизнес и общество. Материалы Апрельской научно-практической конференции молодых учёных, Владивосток; 23 марта - 16 2023 г. Владивосток: Дальневосточный федеральный университет; 2023. DOI: https://doi.org/10.24866/7444-5516-3
  5. Буданцев АЛ. Растительные ресурсы России: Дикорастущие цветковые растений, их компонентный состав и биологическая активность. Дополнения к 1 тому. СПб.; М.: Товарищество научных изданий КМК; 2018.
  6. Сафонова НВ, Трофимова ЕО. Обзор российского рынка растительных препаратов [Электронный ресурс]. Ремедиум. 2021 [дата обращения: 15.10.2023];3. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/obzor-rossiyskogo-rynka-rastitelnyh-preparatov
  7. Тихомирова ЛИ, Щербакова ЛВ, Ильчева ТН, и др. Получение лекарственного растительного сырья с заданным химическим составом и антибактериальной активностью. Химия растительного сырья. 2021;2:309-318. DOI: https://doi.org/10.14258/jcprm.2021029043
  8. Беленовская, ЛМ, Буданцев АЛ, Битюкова НВ. Gynostemma pentaphyllum (Cucurbitaceae): компонентный состав и биологическая активность. Растительные ресурсы. 2018;54(4):443-495. DOI: https://doi.org/10.1134/S0033994618040015
  9. Ларикова ЮС, Маликова НА. Вторичные метаболиты лекарственных растений. Медицина. Социология. Философия. Прикладные исследования. 2022;6:138-141.
  10. Vinogradova Y, Kuklina A, Ryabchenko A. Taxonomic Characteristics of Vegetative Organs for Invasive Species of Reynoutria Hook. Agrobiodiversity for Improving Nutrition, Health and Life Quality. 2021;5(1):160-168. DOI: https://doi.org/10.15414/ainhlq.2021.0015
  11. Park CW, Bhandari GS, Won H, et al. Polyploidy and introgression in invasive giant knotweed (Fallopia sachalinensis) during the colonization of remote volcanic islands. Scientific Reports. 2018;8(1):16021. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-34025-2
  12. Kato-Noguchi H. Allelopathy of knotweeds as invasive plants. Plants. 2021;11(1):3. DOI: http://dx.doi.org/10.3390/plants11010003
  13. Raman G, Park KT, Nam GH, et al. Characterization of the complete chloroplast genome sequence of the giant knotweed, Fallopia sachalinensis from the volcanic island Dokdo, Republic of Korea. Mitochondrial DNA Part B: Resources. 2019;4(2):2972-2973. DOI: http://dx.doi.org/10.1080/23802359.2019.1663769
  14. Békési-Kallenberger H, Horváth G, Bencsik T, et al. Comparative Histological and Phytochemical Study of Fallopia species. Natural Product Communications. 2016;11(2):251-254.
  15. Drazan D, Smith AG, Anderson NO, et al. History of knotweed (Fallopia spp.) invasiveness. Weed Science. 2021;69(6):617-623. DOI: http://dx.doi.org/10.1017/wsc.2021.62
  16. Воронкова НМ, Холина АБ, Журавлев ЮН, и др. Размножение растений российского Дальнего Востока. Владивосток: ФНЦ Биоразнообразие ДВО РАН; 2023.
  17. Dusz MA, Martin FM, Dommanget F, et al. Review of Existing Knowledge and Practices of Tarping for the Control of Invasive Knotweeds. Plants. 2021;10(10):2152. DOI: https://doi.org/10.3390/plants10102152
  18. Stafiniak M, Bielecka M, Kujawa K, et al. Integrative morphological, phytochemical, and molecular identification of three invasive and medicinal Reynoutria species. Scientific Reports. 2025;15(1):6001. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-025-90494-2
  19. Cirlig N, Iurcu-Straistaru E, Titey V, et al. Assessment of the specific diseases in Reynoutria sachalinensis (F. Schmidt) Nakai Under the Influence of Environmental conditions of the republic of Moldova. Scientific Papers Series A. Agronomy. 2023;66(1):279-285.
  20. Kim YJ, Park K, Jang BK, et al. Classification of dormancy types and breakout conditions in Reynoutria sachalinensis exhibiting seed dormancy polymorphism. Horticulture, Environment, and Biotechnology. 2024;65:997-1007. DOI: https://doi.org/10.1007/s13580-024-00626-2
  21. Lu X, Yamaji K, Haruma T, et al. Metal Accumulation and Tolerance in Artemisia indica var. maximowiczii (Nakai) H. Hara. and Fallopia sachalinensis (F. Schmidt) Ronse Decr., a Naturally Growing Plant Species at Mine Site. Minerals. 2021;11(8):806. DOI: http://dx.doi.org/10.3390/min11080806
  22. Bailey JP, Conolly AP. Prize-winners to pariahs-a history of Japanese knotweed sl (Polygonaceae) in the British Isles. Watsonia. 2000;23:93-110.
  23. Šerá B, Doshi P, Věchet L. Extracts from the leaves of knotweeds (Reynoutria spp.) have a stimulating effect on the germination and initial growth of wheat grains. Science of Nature. 2024;111(6):61. DOI: https://doi.org/10.1007/s00114-024-01946-0
  24. European Food Safety Authority (EFSA). Peer review of the pesticide risk assessment of the active substance Reynoutria sachalinensis extract. EFSA Journal. 2015;13(9):4221. DOI: https://doi.org/10.2903/j.efsa.2015.4221
  25. Margaritopoulou T, Toufexi E, Kizis D, et al. Reynoutria sachalinensis extract elicits SA-dependent defense responses in courgette genotypes against powdery mildew caused by Podosphaera xanthii. Scientific Reports. 2020;10:3354. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-020-60148-6
  26. Lachowicz S, Oszmiański J, Wojdyło A, et al. UPLC-PDA-Q/TOF-MS identification of bioactive compounds and on-line UPLC-ABTS assay in Fallopia japonica Houtt and Fallopia sachalinensis (F.Schmidt) leaves and rhizomes grown in Poland. European Food Research and Technology. 2019;245:691-706. DOI: https://doi.org/10.1007/s00217-018-3191-4
  27. Zhang ZL, Li YZ, Wu GQ, et al. A comprehensive review of traditional uses, phytochemistry and pharmacology of Reynoutria genus. Jornal of Pharmacy and Pharmacology. 2022;74(12):1718-1742. DOI: https://doi.org/10.1093/jpp/rgac068
  28. Pogačnik L. Bioactive substances from invasive knotweed species. Journal of EcoAgriTourism.2020;16(1):21-25.
  29. Bensa M, Glavnik V, Vovk I. Leaves of invasive plants – Japanese, Bohemian and giant knotweed – the promising new source of flavan-3-ols and proanthocyanidins. Plants. 2020;9(1):118. DOI: https://doi.org/10.3390/plants9010118
  30. Nawrot-Hadzik I, Slusarczyk S, Granica S, et al. Phytochemical diversity in rhizomes of three Reynoutria species and their antioxidant activity correlations elucidated by LC-ESI-MS/MS analysis. Molecules. 2019;24(6):1136. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24061136
  31. Suprun AR, Kiselev KV, Aleynova OA, et al. Analysis of Phenolic Compounds of Reynoutria sachalinensis and Reynoutria japonica Growing in the Russian Far East. Plants. 2024;13(23):3330. DOI: https://doi.org/10.3390/plants13233330
  32. Vrchotová N, Šerá B, Tříska J. The stilbene and catechin content of the spring sprouts of Reynoutria species. Acta Chromatographica. 2007;19:21-28.
  33. Alrikabi AY, Protska V, Burda N, et al. The Study of Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Raw Materials of Reynoutria sachalinensis (F. Schmidt) Nakai. ACTA Pharmaceutica Sciencia. 2021;59(4):549-558 DOI: https://doi.org/10.3390/plants13233330
  34. Noge K, Abe M, Tamogami S. Phenylacetonitrile from the giant knotweed, Fallopia sachalinensis, infested by the Japanese beetle, Popillia japonica, is induced by exogenous methyl jasmonate. Molecules. 2011;16(8):6481-6488. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules16086481
  35. Eom MR, Weon JB, Jung YS, et al. Simultaneous Determination of Four Compounds, Campesterol, Emodin8-O-β-D-Glucopyranoside, Quercetin, and Isoquercitrin in Reynoutria sachalinensis by High-performance Liquid Chromatography-Diode Array Detector. Pharmacognosy Magazine. 2017;13:258-261. DOI: https://doi.org/10.4103/pm.pm_289_16
  36. Lachowicz S, Oszmiański J. Profile of bioactive compounds in the morphological parts of wild Fallopia japonica (Houtt) and Fallopia sachalinensis (F. Schmidt) and their antioxidative activity. Molecules. 2019;24(7):1436. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24071436
  37. Khalil AAK, Akter KM, Kim HJ, et al. Comparative inner morphological and chemical studies on Reynoutria species in Korea. Plants. 2020;9(2):222. DOI: https://doi.org/10.3390/plants9020222
  38. Fan P, Hay AE, Marston A, et al. Chemical variability of the invasive neophytes Polygonum cuspidatum Siebold et Zucc. and Polygonum sachalinensis F. Schmidt ex Maxim. Biochemical Systematics Ecology 2009;27(1):24-34. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.bse.2008.11.018
  39. Fan P, Terrier L, Hay AE, et al. Antioxidant and enzyme inhibition activities and chemical profi les of Polygonum sachalinensis F. Schmidt ex Maxim. (Polygonaceae). Fitoterapia. 2010;81(2):124-131. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2009.08.019
  40. Zhang X, Thuong PT, Jin W, et al. Antioxidant activity of anthraquinones and flavonoids from flower of Reynoutria sachalinensis. Archives of Pharmacal Research. 2005;28:22-27. DOI: https://doi.org/10.1007/bf02975130
  41. Bensa M, Glavnik V, Vovk I. Flavan-3-ols and proanthocyanidins in Japanese, Bohemian and giant knotweed. Plants. 2021;10(2):402. DOI: https://doi.org/10.3390/plants10020402
  42. Piola F, Bellvert F, Meiffren G, et. al. Invasive Fallopia× bohemica interspecific hybrids display different patterns in secondary metabolites. Ecoscience, 2013;20(3):230-239. DOI: https://doi.org/10.2980/20-3-3597
  43. Nawrot-Hadzik I, Choromańska A, Abel R, et al. Cytotoxic effect of vanicosides a and b from Reynoutria sachalinensis against melanotic and amelanotic melanoma cell lines and in silico evaluation for inhibition of brafv600e and mek1. International Journal of Molecular Sciences. 2020;21(13):4611. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21134611
  44. Thomford NE, Senthebane DA, Rowe A, et al. Natural Products for Drug Discovery in the 21st Century: Innovations for Novel Drug Discovery. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(6):1578. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms19061578
  45. Nawrot-Hadzik I, Zmudzinski M, Matkowski A, et al. Reynoutria Rhizomes as a Natural Source of SARS-CoV-2 Mpro Inhibitors-Molecular Docking and In Vitro Study. Pharmaceuticals. 2021;14(8):742. DOI: https://doi.org/10.3390/ph14080742
  46. Verma S, Twilley D, Esmear T, et al. Anti-SARS-CoV Natural Products With the Potential to Inhibit SARS-CoV-2 (COVID-19). Frontiers in Pharmacology. 2020;11:561334. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2020.561334
  47. Jia HP, Look DC, Shi L, et al. ACE2 receptor expression and severe acute respiratory syndrome coronavirus infection depend on differentiation of human airway epithelia. Journal of Virology. 2005;79(23):14614-14621. DOI: https://doi.org/10.1128/jvi.79.23.14614-14621.2005
  48. Zhou P, Yang XL, Wang XG, et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin. Nature. 2020;579(7798):270-273. DOI: https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7
  49. Li W, Moore MJ, Vasilieva N, et al. Angiotensin-converting enzyme 2 is a functional receptor for the SARS coronavirus. Nature. 2003;426(6965):450-454. DOI: https://doi.org/10.1038/nature02145
  50. Maroli N, Bhasuran B, Natarajan J, et al. The potential role of procyanidin as a therapeutic agent against SARS-CoV-2: A text mining, molecular docking and molecular dynamics simulation approach. Journal of Biomolecular Structure and Dynamics. 2022;40(3):1230-1245. DOI: https://doi.org/10.1080/07391102.2020.1823887
  51. Kulkarni SA, Nagarajan SK, Ramesh V, et al. Computational evaluation of major components from plant essential oils as potent inhibitors of SARS-CoV-2 spike protein. Journal of Molecular Structure. 2020;1221:128823. DOI: https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2020.128823
  52. Ho TY, Wu SL, Chen JC, et al. Emodin blocks the SARS coronavirus spike protein and angiotensin-converting enzyme 2 interaction. Antiviral Research. 2007;74(2):92-101. DOI: https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2006.04.014
  53. Gescher K, Hensel A, Hafezi W, et al. Oligomeric proanthocyanidins from Rumex acetosa L. inhibit the attachment of herpes simplex virus type-1. Antiviral Research. 2011;89(1):9-18. DOI: https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2010.10.007
  54. Khan A, Ali SS, Khan MT, et al. Combined drug repurposing and virtual screening strategies with molecular dynamics simulation identified potent inhibitors for SARS-CoV-2 main protease (3CLpro). Journal of Biomolecular Structure and Dynamics. 2021;39(13):4659-4670. DOI: https://doi.org/10.1080/07391102.2020.1779128
  55. Kim SJ, Lee JW, Eun YG, et al. Pretreatment with a grape seed proanthocyanidin extract downregulates proinflammatory cytokine expression in airway epithelial cells infected with respiratory syncytial virus. Molecular Medicine Reports. 2019;19(4):3330-3336. DOI: https://doi.org/10.3892/mmr.2019.9967
  56. Van Brummelen R, Van Brummelen AC. The potential role of resveratrol as supportive antiviral in treating conditions such as COVID-19–a formulator’s perspective. Biomedicine and Pharmacotherapy. 2022;148:112767. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2022.112767
  57. Dołowacka-Jóźwiak A, Matkowski A, Nawrot-Hadzik I. Antiglycoxidative Properties of Extracts and Fractions from Reynoutria Rhizomes. Nutrients. 2021;13(11):4066. DOI: https://doi.org/10.3390/nu13114066
  58. Kawai Y, Kumagai H, Kurihara H, et al. β-Glucosidase inhibitory activities of phenylpropanoid glycosides, vanicoside A and B from Polygonum sachalinense rhizome. Fitoterapia, 2006;77(6):456-459. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2006.05.008
  59. Nawrot-Hadzik I, Matkowski A, Fast M, et al. The combination of pro-oxidative acting vanicosides and GLUT1 inhibitor (WZB117) exerts a synergistic cytotoxic effect against melanoma cells. Fitoterapia. 2023;171:105702. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2023.105702
  60. Arakawa S, Nakanomio I, Kudo-Sakamoto Y, et al. Identification of a novel compound that inhibits both mitochondria-mediated necrosis and apoptosis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2015;467(4):1006-1011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2015.10.022
  61. Andersen-Civil AIS, Arora P, Williams AR. Regulation of enteric infection and immunity by dietary proanthocyanidins. Frontiers in Immunology. 2021;12:637603. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.637603
  62. Ortega-Arellano HF, Jimenez-Del-Rio M, Velez-Pardo C. Neuroprotective effects of methanolic extract of avocado Persea americana (var. Colinred) peel on paraquat-induced locomotor impairment, lipid peroxidation and shortage of life span in transgenic knockdown parkin drosophila melanogaster. Neurochemical Research. 2019;44:1986-1998. DOI: https://doi.org/10.1007/s11064-019-02835-z
  63. Мухамедьяров МА, Зефиров АЛ. Влияние β-амилоидного пептида на функции возбудимых тканей: физиологические и патологические аспекты. Успехи физиологических наук. 2013;44:55-71. DOI: https://doi.org/10.23868/gc120465
  64. Querfurth HW, LaFerla FM. Alzheimer’s disease. The New England journal of Medicine. 2010;362:329-44 DOI: https://doi.org/10.1056/nejmra0909142
  65. Afzal O, Dalhat MN, Altamimi ASA, et al. Green tea catechins attenuate neurodegenerative diseases and cognitive deficits. Molecules. 2022;27(21):7604. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27217604
  66. Romeo L, Intrieri M, D’Agata V, et al. The major green tea polyphenol,(-)-epigallocatechin-3-gallate, induces heme oxygenase in rat neurons and acts as an effective neuroprotective agent against oxidative stress. Journal of the American College of Nutrition. 2009;28(4):492S-499S. DOI: https://doi.org/10.1080/07315724.2009.10718116
  67. Unno K, Pervin M, Taguchi K, et al. Green tea catechins trigger immediate-early genes in the hippocampus and prevent cognitive decline and lifespan shortening. Molecules. 2020;25(7):1484. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25071484
  68. Chen X, Song X, Zhao X, et al. Insights into the Anti‐inflammatory and Antiviral Mechanisms of Resveratrol. Mediators of Inflammation. 2022;2022(1):7138756. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/7138756
  69. Xu J, Xu Z, Zheng W. A review of the antiviral role of green tea catechins. Molecules. 2017;22(8):1337. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules22081337
  70. Wang Z, Huang T, Guo S, et al. Effects of emodin extracted from Rhizoma polygoni cuspidati in treating HSV-1 cutaneous infection in guinea pigs. Journal of Anhui Traditional Chinese Medical College. 2003;22:36-38.
  71. Lyu SY, Rhim JY, Park WB. Antiherpetic activities of flavonoids against herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and type 2 (HSV-2) in vitro. Archives of Pharmacal Research. 2005;28:1293-1301. DOI: https://doi.org/10.1007/bf02978215
  72. Docherty JJ, Fu MM, Stiffler BS, et al. Resveratrol inhibition of herpes simplex virus replication. Antiviral Research. 1999;43(3):145-155. DOI: https://doi.org/10.1016/s0166-3542(99)00042-x
  73. Kohandel Z, Darrudi M, Naseri K, et al. The role of resveratrol in aging and senescence: a focus on molecular mechanisms. Current Molecular Medicine. 2024;24(7):867-875. DOI: https://doi.org/10.2174/1566524023666230602162949
  74. Chang LK, Wei TT, Chiu Y-F, et al. Inhibition of Epstein–Barr virus lytic cycle by (−)-epigallocatechin gallate. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2003;301(4):1062-1068. DOI: https://doi.org/10.1016/s0006-291x(03)00067-6
  75. Yiu CY, Chen SY, Huang CW, et al. Inhibitory effects of Polygonum cuspidatum on the Epstein-Barr virus lytic cycle. Journal of Food and Drug Analysis. 2011:19(2):3. DOI: https://doi.org/10.38212/2224-6614.2234
  76. Liu Z, Wei F, Chen LJ, et al. In vitro and in vivo studies of the inhibitory effects of emodin isolated from Polygonum cuspidatum on Coxsakievirus B4. Molecules. 2013:18(10):11842-11858. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules181011842
  77. Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S, et al. SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell. 2020;181(2):271-280. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.02.052
  78. Wang C, Horby PW, Hayden FG, et al. A novel coronavirus outbreak of global health concern. The Lancet. 2020;395(10223):470-473. DOI: https://doi.org/10.1016/s0140-6736(20)30185-9
  79. Hilgenfeld R. From SARS to MERS: Crystallographic Studies on Coronaviral Proteases Enable Antiviral Drug Design. FEBS Journal. 2014;281(18):4085-4096. DOI: https://doi.org/10.1111/febs.12936
  80. Anand K, Ziebuhr J, Wadhwani P, et al. Coronavirus Main Proteinase (3CLpro) Structure: Basis for Design of Anti-SARS Drugs. Science. 2003;300(5626):1763-1767. DOI: https://doi.org/10.1126/science.1085658
  81. Jin Y, Yang H, Ji W, et al. Virology, Epidemiology, Pathogenesis, and Control of COVID-19. Viruses. 2020;12(4):372. DOI: https://doi.org/10.3390/v12040372
  82. Dwarka D, Agoni C, Mellem JJ, et al. Identification of potential SARS-CoV-2 inhibitors from South African medicinal plant extracts using molecular modelling approaches. South African Journal of Botany. 2020;133:273-284. DOI: https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.07.035
  83. Tsukuda S, Watashi K, Hojima T, et al. A new class of hepatitis B and D virus entry inhibitors, proanthocyanidin and its analogs, that directly act on the viral large surface proteins. Hepatology. 2017;65(4):1104-1116. DOI: https://doi.org/10.1002/hep.28952
  84. Yang M, Wei J, Huang T, et al. Resveratrol inhibits the replication of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) in cultured Vero cells. Phytotherapy Research. 2021;35(3):1127-1129. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.6916
  85. Lin S, Wang X, Tang RW, et al. The Extracts of Polygonum cuspidatum Root and Rhizome Block the Entry of SARS-CoV-2 Wild-Type and Omicron Pseudotyped Viruses via Inhibition of the S-Protein and 3CL Protease. Molecules. 2022;27(12):3806. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27123806
  86. Schwarz S, Wang K, Yu W, et al. Emodin inhibits current through SARS-associated coronavirus 3a protein. Antiviral Research. 2011;90(1):64-69. DOI: https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2011.02.008
  87. Jang M, Park R, Park YI, et al. EGCG, a green tea polyphenol, inhibits human coronavirus replication in vitro. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2021;547:23-28. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2021.02.016
  88. Chen HF, Wang WJ, Chen CY, et al. The natural tannins oligomeric proanthocyanidins and punicalagin are potent inhibitors of infection by SARS-CoV-2. eLife. 2023;12:e84899. DOI: https://doi.org/10.7554/eLife.84899
  89. Lin HW, Sun MX, Wang YH, et al. Anti-HIV activities of the compounds isolated from Polygonum cuspidatum and Polygonum multiflorum. Planta Medica. 2010;76(9):889-892. DOI: https://doi.org/10.1055/s-0029-1240796
  90. Liu S, Zhang R, Zhang X, et al. The Invasive Species Reynoutria japonica Houtt. as a Promising Natural Agent for Cardiovascular and Digestive System Illness. Frontiers in Pharmacology. 2022;13:863707. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2022.863707
  91. Yamaguchi K, Honda M, Ikigai H, et al. Inhibitory effects of (-)-epigallocatechin gallate on the life cycle of human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1). Antiviral Research. 2002;53(1):19-34. DOI: https://doi.org/10.1016/s0166-3542(01)00189-9
  92. Calland N, Albecka A, Belouzard S, et al. (-)-Epigallocatechin-3-gallate is a new inhibitor of hepatitis C virus entry. Hepatology. 2012;55(3):720-729. DOI: https://doi.org/10.1002/hep.24803
  93. Arita M, Fuchino H. Characterization of Anti-Poliovirus Compounds Isolated from Edible Plants. Viruses. 2023;15(4):903. DOI: https://doi.org/10.3390/v15040903
  94. Lamarche MJ, Borawski J, Bose A, et al. Anti-hepatitis C virus activity and toxicity of type III phosphatidylinositol-4-kinase beta inhibitors. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2012;56(10):5149-5156. DOI: https://doi.org/10.1128/aac.00946-12
  95. Spickler C, Lippens J, Laberge MK, et al. Phosphatidylinositol 4-Kinase III Beta Is Essential for Replication of Human Rhinovirus and Its Inhibition Causes a Lethal Phenotype In Vivo. Antimicrobial. Agents and Chemotherapy. 2013;57(7):3358-3368. DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.00303-13
  96. Zimmermann ML, Sneden AT. Vanicosides A and B, protein kinase C inhibitors from Polygonum pensylvanicum. Journal of Natural Products. 1994;57(2):236-242. DOI: https://doi.org/10.1021/np50104a007
  97. Kim D, Wang CY, Hu R, et al. Antitumor Activity of Vanicoside B Isolated from Persicaria dissitiflora by Targeting CDK8 in Triple-Negative Breast Cancer Cells. Journal of Natural Products. 2019;82(11):3140-3149. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.9b00720
  98. Vasas A, Orbán-Gyapai O, Hohmann J. The Genus Rumex: Review of traditional uses, phytochemistry and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology. 2015;175:198-228. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.09.001