Оценка эффективности применения комплексных фитоадаптогенов в лечении метаболического синдрома
Актуальность: Широкая распространенность метаболического синдрома (МС) становится серьезной проблемой населения во всем мире, повышая риск развития сахарного диабета 2 типа и осложнений со стороны сердечно-сосудистой системы. Цель исследования: Оценить в эксперименте вызванные метаболическим синдромом изменения в системе микрогемодинамики, структуре почек, биохимических показателях плазмы крови, стрессоустойчивости крыс и возможности их коррекции комплексными фитоадаптогенами (КФА). Материалы и методы: Эксперимент проведен на 40 крысах-самцах линии Wistar (возраст 9-10 недель, масса 330 ±20 г), разделенных на 3 группы: 1 группа – контрольная, 2 группа – метаболический синдром (МС), 3 группа – коррекция метаболического синдрома КФА. Животных 2,3 группы содержали на диете с высоким содержанием углеводов и жиров в течение 16 недель. Экстракт КФА состоит из 70% спиртовых экстрактов солодки голой, родиолы розовой, элеутерококка колючего в соотношении 1:2:1. Крысы 3-й группы после 16 недель нахождения на диете принимали КФА 14 дней. Кровь для биохимического анализа собирали через пункцию сердца. Ультразвуковую допплерографию использовали для оценки параметров микрогемодинамики. Тревожность и двигательная активность крыс регистрировались в тесте открытое поле (ОП) и рассчитывались с помощью компьютерной программы Realtimer (OpenScience, Россия). Образцы ткани почек окрашивали гематоксилином-эозином (H&E) и изучали под микроскопом Zeiss Axio Lab (Германия). Анализ полученных данных проводился с использованием программного обеспечения Statistica 10.0 («StatSoft, Inc», Россия). Результаты: На основании результатов проведенного эксперимента можно сделать вывод, что параметры микрогемодинамики (достоверное увеличение систолической (Vas) (Р=0,047) и диастолической (Vakd) (Р=0,046) скоростей кровотока), биохимические показатели (снижение относительно МС общего холестерина на 32,8% (р=0,017), триацилглицеридов на 57,36% (р=0,017), ЛПНП на 64,13% (р=0,017)) плазмы крови попадают под прямое действие комплексных фитоадаптогенов при коррекции метаболического синдрома. Заключение: Использование КФА может стать перспективным дополнением в лечении метаболического синдрома и его компонентов (абдомональное ожирение, резистентность к инсулину, дислипидемия, системная дисфункция эндотелия и др.) путем воздействия на центральные патофизиологические звенья и ряд этиологических факторов МС.
Датиева ФС, Дзампаева ЖВ, Такоева ЕА, и др. Оценка эффективности применения комплексных фитоадаптогенов в лечении метаболического синдрома. Научные результаты биомедицинских исследований. 2023;9(2):206-221.[Datieva FS, Dzampaeva ZhV, Takoeva EA, et al. Effects of complex phytoadaptogens in matobolic syndrome. Research Results in Biomedicine. 2023;9(2):206-221. Russian]. DOI: 10.18413/2658-6533-2023-9-2-0-5
Пока никто не оставил комментариев к этой публикации.
Вы можете быть первым.
Saklayen MG. The Global Epidemic of the Metabolic Syndrome. Current Hypertension Reports. 2018;20(2):12. DOI: https://doi.org/10.1007/s11906-018-0812-z
Afshin A, Forouzanfar MH, Reitsma MB, et al. Health effects of overweight and obesity in 195 countries over 25 years. New England Journal of Medicine. 2017;377:13-27. DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1614362
Lebedev P, Peresypkina A, Gustinovich V, et al. Correction of metabolic disturbances by functional food compositions in experimental obesity in CD-1 and agouti-yellow mice. Functional Foods in Health and Disease. 2022;12(1):26-45. DOI: https://doi.org/10.31989/ffhd.v12i1.874
Cariou B, Byrne CD, Loomba R, et al. Nonalcoholic fatty liver disease as a metabolic disease in humans: A literature review. Diabetes, Obesity and Metabolism. 2021;23(5):1069-1083. DOI: https://doi.org/10.1111/dom.14322
Rochlani Y, Pothineni NV, Kovelamudi S, et al. Metabolic syndrome: pathophysiology, management, and modulation by natural compounds. Therapeutic Advances in Cardiovascular Disease. 2017;11(8):215-225. DOI: https://doi.org/10.1177/1753944717711379
Park SH, Lee SG, Kang SK, et al. Acanthopanax senticosus reverses fatty liver disease and hyperglycemia in ob/ob mice. Archives of Pharmacal Research. 2006;29(9):768-776. DOI: https://doi.org/10.1007/BF02974078
Hong JH, Cha YS, Rhee SJ. Effects of the Cellcultured Acanthopanax senticosus Extract on Antioxidative Defense System and Membrane Fluidity in the Liver of Type 2 Diabetes Mouse. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition. 2009;45(1):101-109. DOI: https://doi.org/10.3164/jcbn.08-263
Lee YH, Hsu HC, Kao PC, et al. Augmented Insulin and Leptin Resistance of High Fat Diet-Fed APPswe/PS1dE9 Transgenic Mice Exacerbate Obesity and Glycemic Dysregulation. International Journal of Molecular Science. 2018;19(8):2333. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms19082333
Kobayashi K, Yamada K, Murata T, et al. Constituents of Rhodiola rosea showing inhibitory effect on lipase activity in mouse plasma and alimentary canal. Planta Medica. 2008;74(14):1716-1719. DOI: https://doi.org/10.1055/s-0028-1088318
Panossian A, Seo EJ, Efferth T. Novel molecular mechanisms for the adaptogenic effects of herbal extracts on isolated brain cells using systems biology. Phytomedicine. 2018;50(4):257-284. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phymed.2018.09.204
Арушанян ЭБ, Бейер Э. Растительные адаптогены. Ставрополь: Ставропольский государственный медицинский университет; 2009.
Saito T, Nishida M, Saito M, et al. The fruit of Acanthopanax senticosus improves insulin resistance and hepatic lipid accumulation by modulation of liver adenosine monophosphate-activated protein kinase activity and lipogenic gene expression in high-fat diet-fed obese mice. Nutrition Research. 2016;36(10):1090-1097. DOI: https://doi.org/10.1016/j.nutres.2016.09.004
Panchal SK, Poudyal H, Iyer A, et al. High-сarbohydrate high-fat diet-induced metabolic syndrome and cardiovascular remodeling in rats. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 2011;57(1):51-64. DOI: https://doi.org/10.1097/FJC.0b013e3181feb90a
Пермяков AA, Елисеева EB, Юдицкий АД, и др. Поведенческие реакции у экспериментальных животных с различной прогностической устойчивостью к стрессу в тесте «открытое поле». Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о земле. 2013;3:83-90.
Flammer AJ, Anderson Т, Celermajer DS, et al. The assessment of endothelial function: from research into clinical practice. Circulation. 2012;126(6):753-767. DOI: https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.112.093245
Virdis A, Taddei S. Endothelial dysfunction in resistance arteries of hypertensive humans: old and new conspirators. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 2016;67(6):451-457. DOI: https://doi.org/10.1097/FJC.0000000000000362
Korokin M, Gudyrev O, Gureev V, et al. Studies to Elucidate the Effects of Furostanol Glycosides from Dioscorea deltoidea Cell Culture in a Rat Model of Endothelial Dysfunction. Molecules. 2019;25(1):169. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25010169
Johnson FK, Peyton KJ, Liu XM, et al. Arginase promotes endothelial dysfunction and hypertension in obese rats. Obesity Research. 2015;23(2):383-390. DOI: https://doi.org/10.1002/oby.20969
Virdis A, Neves MF, Duranti E, et al. Microvascular endothelial dysfunction in obesity and hypertension. Current Pharmaceutical Design. 2013;19(13):2382-2389. DOI: https://doi.org/10.2174/1381612811319130006
Kershaw EE, Flier JS. Adipose tissue as an endocrine organ. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2004;89:2548-56. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2004-0395
Bullo М, Garcia-Lorda P, Megias I, et al. Systemic inflammation, adipose tissue tumor necrosis factor, and leptin expression. Obesity Research. 2003;11:525-531. DOI: https://doi.org/10.1038/oby.2003.74
Korokin M, Gureev V, Gudyrev O, et al. Erythropoietin Mimetic Peptide (pHBSP) Corrects Endothelial Dysfunction in a Rat Model of Preeclampsia. International Journal of Molecular Sciences. 2020;21(18):6759. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21186759
Goldstein BJ, Scalia R. Adiponectin: a novel adipokine linking adipocytes and vascular function. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2004;89(6):2563-2568. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2004-0518
Dodd-o JM, Welsh LE, Salazar JD, et al. Effect of NADPH oxidase inhibition on cardiopulmonary bypass-induced lung injury. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 2004;287(2):927-936. DOI: https://doi.org/10.1152/ajpheart.01138.2003
Virdis A, Masi S, Colucci R, et al. Microvascular Endothelial Dysfunction in Patients with Obesity. Current Hypertension Reports. 2019;21(4):32. DOI: https://doi.org/10.1007/s11906-019-0930-2
Virdis A, Colucci R, Bemardini N, et al. Microvascular Endothelial Dysfunction in Human Obesity: Role of TNF-a. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2019;104(2):341-348. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2018-00512
Panossian A, Seo EJ, Efferth Т. Effects of anti-inflammatory and adaptogenic herbal extracts on gene expression of eicosanoids signaling pathways in isolated brain cells. Phytomedicine. 2019;60:152881. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phymed.2019.152881
Dinel AL, Guinobert I, Lucas C, et al. Reduction of acute mild stress corticosterone response and changes in stress-responsive gene expression in male Balb/c mice after repeated administration of a Rhodiola rosea L. root extract. Food Science and Nutrition. 2019;7(11):3827-3841. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.1249
Panossian AG, Efferth Т, Shikov AN, et al. Evolution of the adaptogenic concept from traditional use to medical systems: Pharmacology of stress- and aging-related diseases. Medical Research Reviews. 2020;41(1):630-703. DOI: https://doi.org/10.1002/med.21743
Xi Z, Chen C, Zhu X, et al. Glycyrrhizin Suppresses RANKL- Induced Osteoclastogenesis and Oxidative Stress Through Inhibiting NF-kB and МАРК and Activating AMPK/Nrf2. Calcified Tissue International. 2018;103(3):324-327. DOI: https://doi.org/10.1007/s00223-018-0425-1
Rochlani Y, Pothineni NV, Kovelamudi S, et al. Metabolic syndrome: pathophysiology, management, and modulation by natural compounds. Therapeutic Advances in Cardiovascular Disease. 2017;11(8):215-225. DOI: https://doi.org/10.1177/1753944717711379
Monserrat-Mesquida M, Quetglas-Llabrés M, Capó X, et al. Metabolic Syndrome is Associated with Oxidative Stress and Proinflammatory State. Antioxidants. 2020;9(3):236. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox9030236
Cha YS, Rhee SJ, Heo YR. Acanthopanax senticosus extract prepared from cultured cells decreases adiposity and obesity indices in C57BL/6J mice fed a high fat diet. Journal of Medicinal Food. 2004;7(4):422-429. DOI: https://doi.org/10.1089/jmf.2004.7.422
Zafar U, Khaliq S, Ahmad HU, et al. Metabolic syndrome: an update on diagnostic criteria, pathogenesis, and genetic links. Hormones. 2018;17(3):299-313. DOI: https://doi.org/10.1007/s42000-018-0051-3
Grandl G, Wolfrum C. Hemostasis, endothelial stress, inflammation, and the metabolic syndrome. Seminars in Immunopathology. 2018;40(2):215-224. DOI: https://doi.org/10.1007/s00281-017-0666-5
Guembe MJ, Femandez-Lazaro CI, Sayon-Orea C, et al. Risk for cardiovascular disease associated with metabolic syndrome and its components: a 13-year prospective study in the RIVANA cohort. Cardiovascular Diabetology. 2020;19(1):195. DOI: https://doi.org/10.1186/s12933-020-01166-6
Lee OH, Kwon YI, Apostolidis E, et al. Rhodiola-induced inhibition of adipogenesis involves antioxidant enzyme response associated with pentose phosphate pathway. Phytotherapy Research. 2011;25(1):106-115. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.3236
Zheng Y, Lee J, Lee EH, et al Combination of Korean Red Ginseng Extract and Glycyrrhiza glabra L. Extract Enhances Their Individual Anti-Obesity Properties in 3T3-L1 Adipocytes and C57BL/6J Obese Mice. Journal of Medicinal Food. 2020;23(3):215-223. DOI: https://doi.org/10.1089/jmf.2019.4660